关注公众号

关注公众号

手机扫码查看

手机查看

喜欢作者

打赏方式

微信支付微信支付
支付宝支付支付宝支付
×

小麦黄化苗总mRNA的提取

2020.9.07

 [实验原理]
RNA是一类极易降解的分子,要得到完整的RNA必须最大限度地抑制提取过程中内源性及外源性核糖核酸酶对RNA的降解。本实验以小麦为材料,采用异硫氰酸胍—苯酚—氯仿抽提法或CTAB法提取总RNA。异硫氰酸胍是高浓度变性剂,可溶解蛋白质,破坏细胞结构,使蛋白质与核酸分离,失活RNA酶,所以RNA从细胞中释放出来时不被降解。细胞裂解后,除了RNA,还有DNA、蛋白质和细胞碎片,通过酚、氯仿等有机溶剂处理得到纯化、均一的总RNA。mRNA仅占总RNA的1%-5%,由于大多数真核mRNA 3’端具有多聚腺苷酸结构(polyA),因此可采用寡聚(d丁)纤维素亲和层析柱分离出mRNA。
[仪器、材料与试剂]
(一) 仪器和材料
紫外线透射仪、移液枪、琼脂糖凝胶电泳系统、小麦黄化苗
(二) 试剂
4M异硫氰酸胍、2M NaAc(pH 4.8)、4M LiCl、3M NaAc(pH5.0),以上均用0.1%焦碳酸二乙酯(DEPC)配制,然后高压灭菌
5X甲醛凝胶电泳缓冲液:吗啉代丙烷磺酸(MOPS)0.1M、NaAc40 mM、EDTA 5 mM
高盐缓冲液:Tris-Cl 10mM;EDTA l mM;NaCI 0.5M ;pH7.4。
低盐缓冲液:Tris-Cl 10mM;EDTA l mM;NaCI 0.1M ;pH7.4。
洗脱缓冲液:Tris-Cl 10mM;EDTA l mM;pH7.4。
CTAB抽提缓冲液配制:用0.1%DEPC溶液配制2%(W/V)CTAB、2%PVP,25mM EDTA、2M NaCl(只配至60%的终体积),于37℃过滤后灭菌,再将DEPC水配制的1M Tris-Cl(pH8.0)稀释至终浓度为100 mM,然后溶入亚精胺至终浓度为0.5g/L,4℃短期保存,-20℃长期保存。
[实验步骤]
(一)提取小麦总RNA
1、实验前10天左右播种小麦种子,生长约10cm黄化苗(避光)。
2、称取1.2g小麦叶片,剪碎(冰浴),移入研钵,在液氮中研磨成粉末状,移入50ml离心管。
3、加入4M异硫氰酸胍4ml,苯酚3ml,2M NaAc(pH 4.8)0.3ml,氯仿0.6ml,混匀,冰浴放置30min(破坏细胞结构,失活RNA酶)。
4、4℃,8000r/min,离心13min。弃沉淀,取上清至另一干净无菌离心管中,加入2倍体积无水乙醇,-20℃,1h。

5、4℃,8000r/min,离心13min。弃上清,在沉淀中加入1ml 4MLiCl,使溶解。移入1.5ml Eppendof管中,冰浴2h。
6、13000r/min,离心15min。弃上清,在沉淀中加入400uL水(经DEPC处理),再加入400uL氯仿混匀(去蛋白)。
7、13000r/min,离心6min。取上清,并加入1/10体积3MNaAc(pH5.0),2倍体积无水乙醇,-20℃放置30min。
8、13000r/min,离心13min。将沉淀RNA用70%乙醇洗涤2次(70%乙醇用DEPC配制),室温下干燥。
9、加入100uL DEPC水溶解,-20℃保存。
注意:提取总RNA时,对所用与RNA有关的仪器进行DEPC处理.操作时应使用一次性手套,所用的溶液都需是RNA专用,以防RNA酶污染.
植物总RNA的提取也可采用CTAB法进行,方法如下:
1、在一50ml DEPC处理过的离心管中加入15ml CTAB植物RNA抽提缓冲液,并加入300ul β-巯基乙醇,混匀并预热至65℃。
1、称取2g小麦叶片,剪碎(冰浴),移入研钵,在液氮中研磨成粉末状,迅速移入加有缓冲液50ml离心管。
2、65℃水浴15min,每隔1-2min混匀一次。
3、加入等体积氯仿,振荡10min,18℃ 1000xg离心10min。
4、取上清液于一50ml DEPC处理过的离心管中,重复步骤4。
5、取上清液于一50ml DEPC处理过的离心管中,加入1/4体积的LiCl(10M),4℃过夜。
6、4℃ 10000xg离心15min。弃上清,500ul DEPC水溶解沉淀,并转入1.5ml RNase-Free的离心管中。
7、加入等体积氯仿,同步骤5,抽提2次。
8、加入2倍体积无水乙醇,-20℃ 2h。
10、4℃ 10000xg离心15min,吸干沉淀。视需要用100-500ul DEPC水溶解沉淀,-70℃保存。
(二) 在甲醛变性凝胶电泳分析总RNA、检查其完整性
1、制备1%变性琼脂糖凝胶:将0.2g琼脂糖溶于水,加入5X甲醛凝胶电泳缓冲液4mL,稍冷却加入37%甲醛3.4mL,混匀,使胶总体积为20mL。倒胶并放在空气中冷却30min.
2、50V电压电泳,至溴酚蓝移至前沿1cm处停止电泳。
3、在EB中染色15-20min,紫外灯下观察结果。
(三)mRNA的分离与纯化
1、将Oligo(dT)-cellulose装入经DEPC处理的柱中,0.1M NaOH浸泡10min,离心除去胶中溶液(350gX2min)。
2、再用DEPC处理过的水洗2遍,每次2.0mL,然后用高盐溶液洗至洗脱液pH<8.0。
3、总RNA在65℃加热5min,冰上冷却,加2倍体积的高盐溶液于总RNA中,混匀,上柱,将溶液与胶混匀,放置10min。
4、收集流出液,重复第3步操作。
5、待溶液从柱上流出后,用高盐溶液洗4次,每次2.0mL,用低盐溶液洗3次每次2.0mL,收集洗脱液。
6、离心(350g* 2min)除去胶中剩余溶液,每次用0.25m1洗脱液,离心(3500*2 min)收集洗脱液,洗3次,总共约0.75mL洗脱液。

7、将洗脱液分成两部分,分别加入0.85mL无水乙醇和0.18mL 7.5M NH4Cl,-20℃放置30min,离心(12 000gXl5rain),用75%乙醇淋洗,抽干后置于-80℃保存。
8、50V电压电泳,EB中染色,紫外灯下观察结果
[实验结果]
从小麦中提取的总RNA以及纯化得到mRNA的甲醛变性凝胶电泳贯观察:可以看出总RNA有三条带(28S、18S、5S),而且28S条带以上还有明显条带,说明总RNA还未降解。mRNA中没有小条带,说明mRNA也未降解。


推荐
关闭