原位杂交实验步骤
原位杂交实验步骤
一质粒制备
1质粒的转化和扩增
1.1制备XL1-Blue感受态细菌
1． 取400uL XL1-Blue菌种加入到含200ml LB培养基的锥形瓶中，37 ℃、100
rpm培养4h，离心，倒置，以冰冷的0.1 mol／L CaCl_2重悬细菌，冰浴30 min，
离心，弃上清，倒置，再加4ml（含15％甘油）冰冷的CaCl2重悬细菌，分装（200 μ／tube），-80 ℃保存。
2． 转化：在冰浴中将1管XL1-Blue感受态菌解冻，将浓度为2ng／μ1的质粒DNA4μ1加入到8Oμ1感受态菌中。
3． 轻轻摇匀，冰浴30 min。
4．42 ℃热激9O秒，然后迅速冰浴2 min。
5． 加入LB培养液（无氨苄青霉素）0.8ml，在37 ℃，100转／min水浴孵育60 min。
6．取200μl菌液铺于琼脂板上（涂有X-Gal（20mg／ml）-IPTG（200mg／ml）的
LB-氨苄青霉素50 mg／ml,1μl／ml培养基），待菌液全部被吸收后，倒置平板于37 ℃培养12-16h。
1.2鉴定和挑选含重组质粒的菌落
1． 用无菌牙签挑取单菌落，接种到10 ml含氨苄青霉素的LB培养液的离心管中，于37 ℃，200转／分培养2h，取1 ml之一Eppendorf离心管，加50μl10mmol／L EDTA（pH 8.0）。
2． 加入50μl新配置的0.2mol／L NaOH、0.5％SDS、20％蔗糖溶液后，振荡3O秒。
3． 在70 ℃温育5 min，然后冷却到室温。
4． 加1.5μ14mol／L KCl和0.5μ1含0.4％溴酚兰染液，振荡3O秒后，冰浴5min。
5． 12000g，4 ℃离以 3 min，以除去细菌碎片。
6． 制备1％的琼脂糖凝胶（含EB0.5μg／ml），取50μl上清液加入到样品孔中，其中一孔加入中等分子量DNA Marker。恒压50V，进行电泳。
7． 当溴酚兰迁移到凝胶全长的2／3-3／4时，停止电泳，在紫外灯下检查质粒DNA分于量的大小是否与转入质粒相符。
1.3质粒的扩增和纯化
1． 用无菌牙签分别挑取单个白色菌落移入含30ml LB-氨苄青霉素（50μg／ml）培养液的聚丙烯管中，于37 ℃，200转／分培养3h。
2． 将菌液转入含70 ml LB-氨苄青霉素培养液的250ml锥形瓶中，37 ℃，200
转／分培养过夜（12-16h），细菌浑浊。
3. 菌液中加入氯霉素液（34mg溶于lml乙醇，100ml菌液加入0.5ml氯霉素
溶液，终浓度为170 μ／ml）。37 ℃，200转／分培养12-16h。
4. 将培养的细菌倒入50ml的离心管中，6000rpm，4 ℃离,th,15 min，沉淀细菌。
5. 弃净上清夜，用2ml预冷的溶液I，悬浮菌体沉淀，剧烈振荡，于室温静置5 min
6. 加入新配制的溶液II 4ml，快速用手晃动10秒，颠倒数次后，于室温静置10 min。
7. 加入预冷的溶液III 3ml，温和振荡l0秒，于冰上静置10 min，出现白色絮状沉淀。
8． 6000rpm，4 ℃离心15 min，保留上清。
9． 将上清（若带细菌残片，则再次离心）移入另一50ml的离心管中，加入O.6
倍体积的异丙醇混匀，于室温静置10 min。（或-20 ℃4h，或4 ℃过夜，可
便核酸沉淀）
10.12000 rpm，4 ℃离心15 min，回收核酸。小心弃去上清，倒置离心管使残
兼上清液流尽。
11．于室温用70％的乙醇洗涤沉淀物和管壁，室温12000 rpm离心，15 min，
充分弃去乙醇，于室温将离心管倒置在纸巾上，使zui后残余的痕量乙醇挥发殆尽。
12．用500μl TE（pH8.0）溶解核酸沉淀，转移至1.5 ml Eppendorf管中。
13．加入用冰预冷的5mol／L的LiCl溶液600μl，充分混匀。12000 rpm，4 ℃离
心15 min，以沉淀高分子量的RNA。
14.将上清转移到另一1.5 ml Eppendorf管中，加等量异丙醇，充分混匀，于室
温静置10min。
15.12000 rpm,4 ℃离心15 min，回收核酸。小心弃去上清，倒置离心管使残
余上清液流尽。
16．于室温用70％的乙醇洗涤沉淀物和管壁，室温12000 rpm离心，15 min，
充分弃去乙醇，于室温将离心管倒置在纸巾上，使zui后残余的痕量乙醇挥发殆尽。
17.400μl含无DNA酶的RNA酶（20μg/ml）的TE缓冲液（pH8.0）溶解沉
淀，将溶液转移到另－1.5 ml Eppendorf管中，室温放置1.5ml Eppendorf
管中30min。
18．加入400μl 13％（v／v）的PEG 8000-NaCl（1.6 mol／L），混匀，4 ℃ 12000
rpm离心5 min以回收质粒DNA，弃去上清。
19．加入400μl TE缓冲液（pH 8.O）溶解沉淀，再分别用等体积的Tris饱和酚、
酚：氯仿：异戊醇（25：24：1）、和氯仿各抽提一次。
20．将水相（上清）移入另一1.5ml Eppendorf管中，加入O.1体积（约50μ13M
的醋酸钠（pH 5.2）和2倍体积（大约1 ml）的无水乙醇，充分混匀后于4
℃放置30 min。
21．于4 ℃ 12000 rpm离心5 min回收沉淀的质粒DNA。尽可能弃去上清，敞
开管口，置工作台上使残留的痕量乙醇蒸发殆尽。
22．加入400 μl处于4 ℃的70％乙醇，稍加振荡，漂洗沉淀，4 ℃ 12000 rpm离
心2 min。
23．吸去上清，室温敞开管口，直到乙醇完全挥发。
24．用100μl TE缓冲液（pH 8.0）溶解沉淀。
25．取4μl溶液1：100稀释后，测定其OD260、OD280，以确定质粒DNA的
纯度和浓度（OD260／OD280>1.8。OD260／OD280对DNA而言其值大约为
1.8，高于2.0则可能有RNA污染，低于1.8则有蛋白质污染。；DNA浓度
=OD260 X 0.05 X稀释倍数（μg／μl）。
26．质粒DNA溶液于-20 ℃保存待用。
二、cRNA探针的标记
1． 将质粒DNA，用相应的限制性内切酶线性化，通过琼脂糖凝胶电泳以确保
完全线性化。
2． 线性化后的DNA按“质粒的纯化”步骤19-24进行纯化，作为cRNA探针
标记的模板，用相应的RNA聚合酶合成地高辛标记的反义和正义RNA探
针。
3． 进行体外转录，步骤如下：
4． 在冰上将各试剂加入一1.5 ml无RNA酶的Eppendorf管中。
DEPC处理的三蒸水8μl
质粒DNA模板 0.05μg／μl
1μl
10 x NTP地高辛标记混合物 1 x
2μl
0.1 M DTT溶液 10 mM
2μl
5 x转录缓冲液 1 x
4μl
RNAse抑制剂 2U／μl
1μl
RNA聚合酶 2U/μl
2μl
反应体系总体积 20μl
5． 加入上述各试剂后，混匀，简短离心后在37 ℃孵育2h。
6． 加入2μl无RNA酶的DNA酶I（10U／μ1），37 ℃孵育15 min降解模板DNA。
7． 加入0.2M EDTA（pH 8.0）溶液2μl终止反应。
8． 加入2.5μl的4 M Licl和7.5μl冷的无水乙醇，混匀，-20 ℃放置2h。
9． 12000g下离以 15 min，弃上清，小心地用50 μl冷的70％乙醇洗涤沉淀。
1O．室温下稍干燥，溶于100μ1 DEPC处理过的三蒸水中，混匀分装，-20 ℃下
保持备用。
三、原位杂交
3.1冰冻切片与杂交前预处理
1． 将子宫样品从-80 ℃取出，用OCT包埋，在-23 ℃（切片机腔体温度）平衡
至少30 min。将包埋好的样品固定在样品头上，切10μm厚的连续组织
切片，平铺于涂有多聚赖氨酸（1mg／m1）的玻片上（玻片预先经180 ℃干
烤6小时），保存于-70 ℃冰柜备用。
2． 冰冻切片经室温干燥10 min后，在4％的多聚甲醛-PBS（pH 7.4）固定lO
min。
3． 活跃的DEPC-PBS（未高压的0.1％DEPC-1XPBS溶液）洗2次，每次5 min。
4． 在0.2M的盐酸作用中作用10 min后，重复步骤4）。
5． 在切片上滴加蛋白酶K（0.1μg／m1），37 ℃孵育15 min，重复步骤4）。
6． 经0.1M TEA（三乙醇胺）作用5min后，再在新配制的0.25％AA／0.1M TEA
