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光镜下细胞大小的测量与计数

2020.9.15

一、实验目的

1.学会观察某些细胞形态,掌握显微镜使用方法。

2.掌握测量和计算细胞大小的方法。

3.掌握台尺,目尺的使用方法,知道细胞度量单位。

4.掌握血球计数板的使用方法

二、实验原理

(一)显微测微尺

显微测微尺分物镜测微尺和目镜测微尺,目镜测微尺为一块可以放入目镜内的圆形玻片,玻片中央有一长5-10mm的刻度尺,分成50-100格。每格的实际长度随不同的物镜放大倍数而变化。物镜测微尺为一载玻片中封固一圆形测微尺组成,测微尺的长度为1-2mm,分成 100或200格,每格实际长度0.01mm。当测量细胞大小时,须在显微镜下用物镜测微尺核实目镜测微尺的每一格长度,然后再用目镜测微尺去测定标本。

换算公式:目尺每格长度(mm)= 物尺的格数/目尺的格数×10㎛

(二)血球记数板

现在使用的记数板为改良Neubauer记数板,由一优质厚玻璃制成,每块记数板分为两个记数室。在记数室两侧各有一条支柱,与记数室高度差是0.1mm,当一块平整的记数用盖玻片放到两条支柱上时,盖玻片底面与记数室间形成0.1m的缝隙。每个记数室的边长各为 3mm,并被精密地划分为9个大方格,每个大方格长宽各为1.0mm,面积为1mm²,加盖玻片后的容积为1mm² ☓ 0.1mm=0.1mm³(相当于0.1㎕),所以一个大方格的细胞数×104=细胞数/ml。记数细胞时,记数四个大方格中的细胞数,按下公式计算:

细胞悬液的细胞数/ml=(四个大方格中的细胞总数/4) × 104

三、实验器材、药品

普通光学显微镜,微分尺(目尺和台尺),血球计数板,洋葱内表皮细胞,小鼠脾细胞等。

四、实验步骤

(一)在光学显微镜下测量细胞大小:

1.卸下目镜的上透镜,将目镜测微尺有刻度一面向下装在目镜镜面上,再旋上目镜的上透镜。

2.将镜台测微尺有刻度一面朝上放在载物台上夹好,用低倍镜观察,调焦至看清镜台测微尺的刻度。

3.小心移动镜台测微尺,同时转动目镜(如目镜测微尺刻度模糊,可转动目镜上透镜进行调焦),使目镜测微尺与镜台测微尺平行靠近,两尺左边的\"0\"点一直线重合,然后由左向右找出两尺另一次重复的直线。

4.记录两条重合线间目镜测微尺和镜台测微尺的格数。按公式计算目镜测微尺每格的长度等于多少mm。

5.拿开台尺,放上细胞标本片,开始测量,按上述公式计算。

(二)细胞计数

(1)准备计数板:用去离子水浸泡并冲洗计数板及专用盖玻片,然后用绸布轻轻拭干或晾干。

(2)制备细胞悬液:用消化液分散单层培养细胞或直接收集悬浮培养细胞,制成单个细胞悬液。本法要求细胞密度不低于 104细胞/ml,若细胞数很少,应将悬液离心(1000rpm,2min),重悬浮于少量培养液中。

(3)加样:用吸管轻吹打细胞悬液,取少许细胞悬液,在计数板上盖玻片的一侧加微量细胞悬液,加样量不要溢出盖玻片,也不要过少或带气泡。

(4)计数:在显微镜下,用10×物镜观察计数板四角大方格中的细胞数,细胞压中线时,只计左侧和上方者,不计右侧和下方者。

(5)计算:将计算结果代入下式,得出细胞密度(4大格中的每一大格体积为0.1mm3。 1ml=l,0000大格,因此,1大格细胞数×104=细胞数/ml)

细胞数/毫升原液=(4大方格细胞数之和/4)×104

注意事项:

(1)消化单层细胞时,务求细胞分散良好,制成单个细胞悬液。否则会影响细胞计数结果。

(2)取样计数前,应充分混匀细胞悬液。在连续取样计数时,尤应注意这一点。否则,前后计数结果会有很大误差。

(3)镜下计数时,遇见2个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算。如细胞团占10%以上,说明消化不充分;或细胞数少于200个/10mm2或多于500个/10mm2时,说明稀释不当,需重制备细胞悬液、计数。


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