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昨日明星LncRNA搭上m6A后逆袭为今天新星

2021.4.19


m6A RNA甲基化是当前在LncRNA,环状RNA等非编码RNA之后最为火热的科研明星,到底有多火?摆出数据告诉你!   2019年才过去一半还不到,已发表文章数就已占去年的7成。RNA甲基化领域,不仅文章数量多,高分文章也有许多。据统计,仅2019年上半年就发表了多篇Nature,Cell,Cell Stem Cell,Nature Immunolgy这类的顶级期刊,10分以上m6A文章就有18篇之多。   m6A RNA甲基化作为2018年国自然热点,申请的课题主要围绕writer,eraser和reader。   做腻了writer,eraser?那让我们来看看reader,YTHDF家族由于在核外参与蛋白翻译和降解,是reader里最明星的研究对象,可m6A reader酶千千万万,您研究的基因除了YTHDF家族外,可能还与其他reader结合。   今天,让我们开开脑洞,谈一谈另一个reader hnRNPA2B1,看看像这类核内核外都有表达的reader是怎么来做研究的。   文章导读   结直肠癌Colorectal cancer(CRC)是一类肠道发生癌变的疾病。目前,关于CRC发生和转移相关的分子机制还未有详细报道。已有研究指出,LncRNA分子在肿瘤发生,发展,甚至是迁移的过程中发挥重要机制。因此,本文以LncRNA为切入点,首先通过LncRNA测序找到一个目标LncRNA---RP11,在CRC中高表达的趋势,且表型与细胞迁移正相关。接着,通过RNA Pull Down-质谱技术,证实该LncRNA与下游蛋白hnRNPA2B1是直接结合关系,该蛋白可是m6A RNA修饰的明星阅读酶(Reader)呀!那这个LncRNA势必也参与了m6A RNA 甲基化的过程。接下来,让我们跟随作者思路,看看LncRNA结合m6A的机制类文章是怎么做的。   发表期刊:Molecular Cancer   影响因子:7.8   实验方法:LncRNA 测序,MeRIP-qPCR,RNA Pull Down,RIP,LncRNA定量PCR,mRNA定量PCR   实验材料:CRC临床样本等,结直肠癌细胞系等   文章内容   1. LncRNA RP11在CRC细胞和组织中高表达   CRC组织(癌症1期和癌症3期)与癌旁组织分别进行LncRNA测序(云序可提供此服务),筛选到在癌症1期和3期都差异高表达的LncRNA---RP11。在测序样本和32个临床样本组织中,通过LncRNA 定量PCR证实其在实验组中高表达。已有结肠癌和直肠癌数据库结果也证实这类表达趋势。RP11在多个结直肠癌细胞系中广泛表达,并在CRC患者转移性淋巴结组织原代培养的SW620细胞中高表达。   图1. RP11在CRC组织和细胞中高表达   2.RP11在体内和体外诱导CRC细胞散布   为进一步阐明RP11在体内和体外的功能机制。作者首先证实RP11过表达细胞系能够显著促进细胞的迁移能力。由于此过程影响了E-Cad,FN和Vim等标志物蛋白的表达量,因此可能与EMT和癌症转移相关。接着,作者在异种移植肿瘤的裸鼠体内高表达RP11基因,发现该基因能够促进肿瘤的增殖。作者在裸鼠体内通过尾部注射方式,导入稳定高表达RP11的癌症细胞,饲养8周后,发现这些细胞转移至小鼠肝脏组织中。   图2. 体外:RP11促进癌细胞迁移   体内:RP11促进癌组织增殖和迁移   3.转录因子Zeb1介导RP11调控CRC细胞散布   已有研究表明,LncRNA能够通过顺势调控机制影响其周围的转录本表达。因此,本研究在LncRNA RP11周围找到了6个转录本,分别为NUDT12, C5orf30, PPIP5K2, GIN1, RP11-6 N13.1和CTD-2374C24。通过mRNA定量PCR证实以上转录本不管是在RP11高表达组以及RP11表达量最高的SW620细胞系中,都未差异表达。所以,RP11的功能机制不是通过顺势调控的模式影响的。   既然不是顺势调控引起的,那还会是什么呢?   是否是下游结合蛋白呢?   为了证实以上猜想,作者在过表达细胞中通过mRNA定量PCR技术,检测了多个与EMT相关因子的表达量,检测结果显示Zeb1与RP11的表达模式正相关。并且在Zeb1过表达细胞系中,证实能够影响FN和Vim标志物的表达量。因此,RP11的下游可能是Zeb1。   为了验证前面的猜想,作者通过Zeb1 RIP-LncRNA PCR(云序可提供此服务)和RP11 Pull Down-质谱技术(云序可提供此服务),证实Zeb1与RP11在mRNA和蛋白层面都不是直接结合的关系。   图3. Zeb1可能是RP11间接的下游   4.RP11-hnRNPA2B1-mRNA复合体参与RP11调控Siah1和Fbxo45   同样的,作者推测下游蛋白可能是Siah1和Fbxo45。在mRNA层面,通过RP11 RIP-mRNA PCR,证实两者调控了RP11和Zeb1的表达。在蛋白层面,通过RP11 Pull Down-质谱技术证实三者并非直接结合。   那到底是什么蛋白连接着三者呢?   为证实RP11是如何调控下游mRNA Siah1和Fbxo45,作者在前期RP11 Pull down-质谱结果中,找到与RP11直接结合的hnRNPA2B1蛋白。hnRNPA2B1 RIP-mRNA PCR实验证实RP11,Siah1和Fbxo45在mRNA层面是直接结合的关系。已有研究表明hnRNP2B1是一种RNA结合蛋白,在细胞核及细胞质中广泛分布。通过结构分析LncRNA结构,证实其能够与Siah1的CDS区和Fbxo45的3’UTR区结合。总的来说,RP11通过形成RP11-hnRNPA2B1-mRNA复合体调控下游mRNA Siah1和Fbxo45的表达。   图4. RP11形成RP11-hnRNPA2B1-Siah1-Fbxo45复合体参与细胞迁移   5. m6A修饰参与CRC细胞中RP11表达上调机制   首先,作者怀疑RP11的高表达与DNA甲基化相关,通过DNA甲基化抑制酶处理细胞后,发现RP11表达量不变,证实在CRC细胞中RP11表达量与DNA甲基化无关。同时,实验也证实其与组蛋白乙酰化无关。   那到底是什么修饰调控了RP11的表达呢?   已有研究表明m6A修饰调控LncRNA的表达及功能过程。作者通过MeRIP-qPCR技术(云序可提供此服务),在三种细胞系中都证实了RP11上发生了m6A RNA甲基化修饰。并且分别过表达甲基化转移酶METTL3和去甲基化转移酶ALKBH5都能够影响RP11的表达。接下来,作者旨在CRC细胞中深入研究m6A 修饰是如何调控RP11表达的?首先,笔者借助Act-D物质抑制转录过程,发现在Mettl3过表达组中RP11的表达量没有受到影响,原因可能是Mettl3促进RP11在染色质中积累,从而对RP11的表达起到了稳定作用。m6A reader蛋白hnRNPA2B1参与了此过程。   图5. RP11存在m6A修饰并受Mettl3和AlKBH5调控   6. m6A/RP11/Zeb1间的关系和CRC细胞体内的进展   通对分析大量不同分期临床样本表达情况表明m6A修饰先调控RP11,RP11在影响Siah1-Fbxo45/Zeb1。借助KM曲线,作者发现高表达RP11直肠癌患者的生存情况并不乐观。同时,也分析了下游基因与病人其他临床指标间的关系。总体而言,证实了m6A/RP11/Zeb1促进了CRC的发生发展过程。   总结   在本研究中,作者首先通过LncRNA高通量测序手段,在CRC疾病组中筛到高表达的LncRNA----RP11,并证实其能够促进肿瘤迁移。   随后,作者旨在研究RP11下游结合蛋白是什么,是如何调控促进迁移表型的。   一方面:借助LncRNA Pull Down,快速锁定与RP11结合的蛋白就是m6A reader hnRNPA2B。通过RIP-PCR,快速找到与该蛋白结合的RNA是RP11。另一方面,借助MeRIP-qPCR,证实在3种疾病相关细胞系中RP11上都存在着m6A 修饰的情况。同时,Mettl3作为其上游促进RP11稳定性,从而促进CRC的发生发展。   云序推荐技术路线   红色字体部分的实验,云序提供一站式服务   云序生物国内独家提供RNA甲基化测序一站式服务   云序生物提供比色法检测整体m6A甲基化修饰水平、RNA甲基化测序、MeRIP-qPCR验证、RIP和RNA Pull Down机制研究服务。RNA甲基化测序技术是真正实现m6A,m5C和m1A修饰,检测分子除mRNA外,还能检测环状RNA,LncRNA及其他非编码RNA。2016年至今,样本数量累积超过5000+,MeRIP富集成功率高达98%以上。   现在,为解决客户样本量少的问题,特推出超微量MeRIP测序技术,500ng总RNA既可进行测序实验。特殊样本也可进行RNA甲基化测序,如血清,血浆,外泌体和石蜡样本。
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