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PBMC细胞的精确计数和活性分析(二)

2020.6.16

三、如何精确计数PBMC和活力分析检测

通过AOPI染料进行双荧光计数和活力分析,是可以排除红细胞、血小板、细胞碎片等污染的精确计数方法。

AO(吖啶橙)和PI(碘化丙啶)是可对DNA染色的细胞核染色试剂。其中AO可以通过完整的细胞膜,嵌入所有细胞(活细胞和死细胞)的细胞核,呈现绿色荧光;PI只能通过不完整的细胞膜,即死细胞的细胞膜,嵌入所有死细胞的细胞核,呈现红色荧光。

活死单个核细胞可呈现荧光信号。而成熟的红细胞及血小板,因为没有细胞核,不能被AO/PI染色,因此可以完全被排除在外不被计数。

201442113821.jpg

通过AOPI染料进行双荧光计数和活力分析,可以精确计数分离后的PBMC以及活力分析,亦可进行全血中的PBMC。

 

 

分离液后样本PBMC计数&活性分析举例       全血样本PBMC计数细胞及活性分析举例

   201442113527.jpg           201442113183.jpg

       明场图像显示RBC/血小板污染                        明场图像根本无法计数

     

         双荧光活力分析仪结果报告输出                       双荧光活力分析仪结果报告输出

201442113614.jpg201442113676.jpg

四、Cellometer细胞计数和活力分析仪器型号选择

1.       双荧光计数和活力分析是PBMC计数的最佳选择方法。

三款仪器型号可选:AUTO2000/K2/ VISION CBA,可精确、快速、简便进行PBMC计数和活力分析。

     201442113292.gif  201442113864.gif201442113135.gif

AUTO2000双荧光细胞活力分析仪     K2双荧光细胞分析仪             VISION CBA细胞功能分析系统

触屏操控                                       电脑操控          电脑操控,高配置,可分析凋亡&细胞周期等

 

2.       明场的自动细胞计数仪进行PBMC计数,可通过台盼蓝排斥法进行PBMC的活力检测。

虽然也能达到自动、快速的目的,但是仍无法有效的排除红细胞的干扰,达到精确计数的目的。

台盼蓝排斥法检测细胞死活,是通过台盼蓝这个细胞活性染料,其不能透过活细胞正常完整的细胞膜,故活细胞不着色,但死亡细胞的细胞膜通透性增加,可使染料通过细胞膜进入细胞内,使死细胞着色呈蓝色。是最常用的检测细胞活率的方法。

但是台盼蓝排斥法并不能精确计数活死细胞,原因是细胞膜通透性不一样,进入细胞内的染料差异也很大,所以经常会出现很难判定是死细胞还是活细胞。

如果对PBMC计数的准确性要求不是很高,但是需要快速、自动计数,而且对实验的一致性和重复性的要求高,可选择以下三款计数仪:AUTO1000/MINI/AUTO T4。

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MINI自动细胞计数仪        AUTO1000一体式细胞计数仪      AUTO T4自动细胞计数仪

电脑操控,小巧美观,性价比高           一体化设计,触屏操控          经典款,符合GLP/GMP

 

参考文献

1.     Chan, L.L., Wilkinson, A.R., Paradis, B.D. and Lai, N. (2012b) Rapid Image-based Cytometry for Comparison of Fluorescent Viability Staining Methods. Journal of Fluorescence 22, 1301-1311.

2.     Almeida, C.-A.M., Roberts, S.G., Laird, R., McKinnon, E., Ahmed, I., Pfafferott, K., Turley, J., Keane, N.M., Lucas, A., Rushton, B., Chopra, A., Mallal, S. and John, M. (2009) Automation of the ELISpot assay for high-throughput detection of antigen-specific T-cell responses. Journal of Immunological Methods 344, 1-5.

3.     Constantino, B.T. and Cogionis, B. (2000) Nucleated RBCs - Significance in the Peripheral Blood Film. Laboratory Medicine 31, 223-229.

4.     Laroche, V., McKenna, D.H., Moroff, G., Schierman, T., Kadidlo, D. and McCullough, J. (2005) Cell loss and recovery in umbilical cord blood processing: a comparison of postthaw and postwash samples. Transfusion 45, 1909-1916.

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6.     Szabo, S.E., Monroe, S.L., Fiorino, S., Bitzan, J. and Loper, K. (2004) Evaluation of an Automated Instrument for Viability and Concentration Measurements of Cryopreserved Hematopoietic Cells. Laboratory Hematology 10, 109-111.

 


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