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燕麦转基因及其在提高渗透胁迫耐受中的应用实验(二)

2020.8.24

4. 转基因遗传分析

( 1 ) 低温处理后,种子(每皿 10~12 粒)在 MS7 ( 25 ml/皿)培养基上萌发 1 周,用于分析转基因的遗传特性,如在 R。、R1、R2 代中 bar 基因的遗传稳定性(见注 11)。

( 2 ) 或者在温室中,利用多孔塑料盘(Griffin   Green  House  and   Nursery  Supplies) 在土中(Metro  Mix 360 Soil) 萌发种子并生长 2 周。用除草剂喷洒生长的植株(见注12)。

( 3 ) 1 周后,统计选择培养基上萌发和未萌发的种子数,或温室中除草剂处理后存活和死亡的植株数。

( 4 ) 采用 X2 检验(53 ) 分析转基因在 R。、R1、R2 代的分离(表 10.2)。

 

5. 转基因植株的分子检测

(1) 聚合酶链反应(PCR)

① 转基因植株中转基因的检测(如 bar 和 hav1) : 用叶片遵照 REDExtract- N-Amp  Plant  PCR试剂盒(Sigma- Aldrich, St.   Louis, MO, Cat#  XNA- P ) 的说明书操作提取 DNA。

② 使用正向(F ) 和 反向(R ) PCR 引物:例如,bar- F:5'-ATGAGCCCAGAACGACG-3';bar- R:5'-TCA  GATCTCGGTGACGG-3';hva1-R:5' -TGGCCTCCAACCAGAACCAG-3';hva1- R:5'-ACGACTAAAGGA ACGGAAAT-3’。

③ 在 PCR 仪(如 Per-kin  Elmer/Applied  Biosystem, Foster  City,  CA) 上进行  DNA 扩增。扩增反应起始用 94°C 变性 4 min,随后 94°C 1 min、55°C 1 min、72℃ 2 min 进行 35 个循环,最后 72°C 延伸 10 min。

④ 在 0.8%  (m/V) 的琼脂糖凝胶分离并分析 PCR 产物,凝胶用 EB 染色后在紫外灯下观察。转基因条带大小分别是: bar 为 0.59 kb,hva1 为 0.70 kb [ 图 10.3  ( a ) ]。

 

(2) Southern  杂交分析

① 用基因编码区(如 hva1 或 bar1 ) 序列作为探针进行 Southern 杂交 [54]。

② 用 Phytopure 植物 DNA 提取试剂盒(Amersham-Pharmacia  Biotech) 提取转基因和非转基因植株的基因组DNA。

③ 用 10 μg R0、R1 和 R2 代植株的基因组 DNA 进行 Southern 杂交分析。

④ 用 HindIII 和 HindIII-BamH I 限制酶酶切消化基因组 DNA,然后在 0.8% 的琼脂糖胶上电泳分离片段。

⑤ 将胶变性和中和并印迹到 Hybond-N+ 膜上(Amersham-Pharmacia Biotech) , 依照 Sambrook 等描述的方法[55]。

⑥ 用 HindIII-BamH I 酶切 pBY520 质粒,在 0.8% 的低熔点胶上分离带有 hva1 编码区的片段。切下 1.0 kb 的片段,用 QIAquick PCR 纯化试剂盒纯化该片段。

⑦ 用 Rad 引物标记试剂盒(GIBC0 BRL) 对纯化的基因特异的 DNA 片段进行 [ 32P] -dCTP 放射性标记,方法参照说明书。

⑧ 按照标准程序[ 55 ] 用 hav1 基因特异探针与准备好的膜进行杂交。

⑨ 随后,-80°C 条件下用 X 光胶片(Kodak ) 放射自显影分析杂交膜 [ 图10.3 ( b )]。

(3) Northern 杂交分析

① 用 TRIZOL (GIBCO BRL) 提取转基因和非转基因植株幼叶的总 RNA,方法参照说明书。

② 依照 Sambrook 等的方法在 1.2% 的琼脂糖-甲醛变性胶中电泳分离 10 μg 总 RNA [55]。

③ 依照 Sambrook 等的方法将股印迹到 Hybond-N+ 尼龙膜(Amersham-Pharmacia Biotech) 上 [55]。

④ 按照标准的 Northern 杂交程序 [55],用 32P 标记的基因特异的探针分析 hva1 的转录情况 [ 图 10.3 ( c ) ]。

(4) Western 杂交分析

① 蛋白质提取、Western 杂交和免疫检测参照 Xu 等的方法[48]。

② 在液氮中研磨约 0.1 g 转基因和非转基因植株的新鲜叶片,加入 0.2 ml 蛋白提取缓冲液提取蛋白质。

③ 用 Bio-Rad 蛋白分析试剂( Bio-Rad) 按 Bradford 的方法测定每一样品的总蛋白浓度 [56]。

④ 用 12% SDS 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离 100 μg 转基因和非转基因样品的可溶性总蛋白。

⑤ 电泳结束后,使用半干转移系统( Bio- Rad ) 将蛋白质电转到硝酸-纤维素膜上(Amersham-Pharmacia  Biotech) ,方法参照仪器说明。

⑥ 将 Western 膜分别和转基因特异蛋白(如 HVA1 ) 免疫产生的一抗( 如兔抗血清)及二抗(带有碱性磷酸酶的兔 IgG 的抗体,Sigma- Aldrich) 孵育。

⑦ 在碱性磷酸酶的缓冲液中进行膜显色 [ 图10.3  ( d ) ]。


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