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一、材料
1. 缓冲液和溶液
2.5X SDS-EDTA 染料混合物
2. 酶和缓冲液
DNaseⅠ稀释缓冲液，胰 DNase Ⅰ (1 mg/ml)
3. 凝胶
琼脂糖凝胶（0.7%)，用 0.5X TBE，含 0.5 μg/ml 溴化乙锭
4. 核酸和寡核苷酸
λ 噬菌体 DNA ( 对照 DNA)
5. 专用设备
预置于 65℃ 的水浴
6. 载体和菌株
λ 噬菌体裂解物或原种
二、方法
1. 按如下方法配置胰 DNaseⅠ 的工作液（1 μg/ml)：1 μl DNase Ⅰ 储液加 1 ml 冰冷的 Dnase Ⅰ稀释缓冲液进行稀释。
2. 将封口的试管轻轻上下颠倒数次使溶液混匀，注意别产生气泡和泡沬。在使用前将工作液贮存于冰浴中，用后舍弃。
平板裂解物的粗制品得到一条清晰的 λ 噬菌体 DNA 带。但是，液体裂解物一般含细菌 DNA 片段，在琼脂糖凝胶中将干扰噬菌体 DNA 带。在用 SDS 和 EDTA 处理释放 λDNA 之前，先用胰 DNaseⅠ 处理噬菌体颗粒，将能避免该问题的产生。
3. 将 10 μl 噬菌体裂解物或原种的粗制品转移至一微量离心管中，加 1 μl 胰 DNase 工作液，37℃ 温育 30 min。
4. 加入 4 μl 2.5X SDS-EDTA 染料混合物，65℃ 温育 5 min。
这一步使噬菌体的外壳破裂，释放病毒 DNA，同时使 DNase 失活。
5. 将样品上样于含 0.5 μg/ml 溴化乙锭的 0.7% 琼脂糖凝胶中。
用 5 ng、25 ng 和 100 ng 的 λ 噬菌体 DNA 作对照。
6. 在小于 5 V/cm 的电场下电泳，直到溴酚蓝迁移 3~4 cm。
如果电压太高，DNA 带将出现拖尾现象。
7. 在紫外线下观察凝胶。用标准 DNA 的荧光密度作对照，估算测试样品中 λ 噬菌体 DNA 的量。
10 μl 的高滴度裂解物应含有 10~50 ng 的噬菌体 DNA。
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