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高通量SNP分子分型技术(KASP技术)经验分享

2020.8.18

  重要的事情说三遍,终于可以开始实验了,但在实验前或实验中乃在实验后,根据小编多年的经验,您可能会遇到以下问题,不用担心,待小编为您一一解答.

  1.引物设计提交序列时的注意事项有哪些?

  我们要求所提交的序列长度至少为目标位点上下游各50bp。请注意序列来源,尽量保证序列准确,多态性位点BLAST结果证明为单拷贝也就是要特异。标注出不确定的序列及引物设计时需要跳过的碱基和序列,目标位点周围其他多态性位点(最多可以有2个)用IUPAC码标注。

  2. PCR反应体系是怎样的?

  96孔板,10μL 体系,其中5μL DNA, 5μL mix, 0.14 μL引物。

  384孔板,5μL体系,其中2.5μL DNA , 2.5 μL mix, 0.07μL引物。

  384 Array Tape, 1.6μL 体系,其中0.8 μL DNA, 0.8μL mix, 0.022μL 引物。

  1536孔板,1ul 体系,其中1.5 μL DNA (烘干),1 μL mix, 0.014μL引物。

  3. KASP技术对DNA有什么要求?

  建议最小的DNA浓度为2.5 ng / μL。根据基因组大小,所需的DNA的量为:待测样品基因组/3000Mb*5ng。建议设置DNA浓度梯度实验,来确定最合适的DNA浓度。 KASP 对DNA纯度的要求不高, 一般粗提的DNA即可满足,但请尽量保证DNA浓度的一致性, 提取及溶解过程中尽量不要用到EDTA, 因为 EDTA会阻止KASP酶的作用。如有EDTA,建议将DNA稀释一下,做一下浓度梯度实验或加MgCl2优化。

  4. 多个引物可以同时跑在同一块板子上吗?

  可以,但KASP技术要求每个引物至少跑22个样品加两个NTC,否则可能影响分群判读,造成较大的误差。

  5. NTC信号值很高,怎么办?

  NTC跑很高可能有三个原因,一是NTC被DNA样品污染,二是循环数太多,引物 自身扩增。建议多加几个NTC,注意污染问题,再看看。三是,引物设计问题,扩增产物中有引物二聚体存在, 建议重新设计引物。

  6. 为什么需要recycling(加循环), 什么时候需要加循环?

  我们以36个循环作为标准的反应程序,由于不同的引物扩增速度及效率不同,部分引物在36个循环时并不能达到反应终点,导致荧光信号较低,分群较分散,影响数据分析。因此,当您发现在跑了36个循环时信号值较低,分群较分散但有分群趋势,即可选择加循环(94度--20秒,57度--60秒,3个循环)。如果NTC没有扩增,最多可加4次循环。

  7. KASP 试剂的储存条件及建议是什么?

  KASP 引物及Master mix 可在4度保存一周,建议储存在-20度/-80度, Master mix需避光保存, 避免反复冻融(尽量冻融不要超过3次),建议事先将其分装。保存得当,可延长KASP试剂的使用寿命至2-3年。

  8. 用qPCR仪做KASP genotyping, 有哪些注意事项?

  请确定您的qPCR仪型号,订购合适ROX水平的Master mix。请在40度以下读取KASP的终点荧光信号,分析数据时请注意调整XY坐标轴最大最小值相当。所有数据均建议在Autocall 后进行人工判读。如有可能,建议样品板中加阳性对照DNA。

  9. 目标片段GC含量太高或太低有什么建议?

  对于高GC含量片段(GC%>65%)的扩增,建议首先尝试把标准的touch down 程序(61oC-55oC) 改成68oC-62oC。如果效果不好,再尝试加5%-10%Master mix 体积的DMSO。关于低GC含量的片段扩增(GC%<40%),建议首先尝试将touchdown 取消,改为两步法。如果效果不好,再尝试加0.63% 或1.06% Master mix 体积的MgCl2。

  10. 反应完成后的PCR板还可保存多长时间?

  反应完成后的PCR板可在4度保存一周,荧光信号仍会比较稳定。一周之内加循环或重读数据均可。


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