DNA提取前为什么要先进行红细胞裂解
血液基因组DNA提取前为什么要先进行红细胞裂解
全血基因组DNA提取试剂盒作用原理：
全血基因组DNA提取试剂盒特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统，提取全血基因组DNA。 离心吸附柱中采用的硅基质材料为新型材料，能够高效、专一吸附DNA，可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。
全血基因组DNA提取试剂盒使用说明：
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶体上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
样品的处理(本产品适用于处理新鲜的或已经添加抗凝剂的0.lmL-1mL血液样品)：
a、在血液样品中加入2-3倍体积的红细胞裂解液，充分颠倒混匀，12000rpm离心1min，小心吸去上清，沉淀应为白色或淡红色，如果裂解不彻底，可重复以上述步骤一次。向沉淀中加200μL溶液YA，振荡至彻底混匀。
b、 如果处理的血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量为5-20μL，不需要再用红细胞裂解液处理，直接加200μL溶液YA，振荡至彻底混匀。
向悬浮液中加入20μL 的RNase A (10mg/mL)，充分颠倒混匀，室温放置10min。
加入20μL的蛋白酶K( 10mg /mL )，充分颠倒混匀，65℃水浴消化30-60min，消化期间可颠倒离心管混匀数次，直至样品消化完全为止。
加入200μL溶液YB，再加入200μL无水乙醇，充分颠倒混匀，此时可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中，室温放置2min。
12000rpm离心2min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
向吸附柱中加入600μL漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
向吸附柱中加入600μL漂洗液，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
12000rpm离心2min，将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR等。
将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加50-200μL经65℃水浴预热的洗脱液，室温放置5min，12000rpm离心1min。
离心所得洗脱液可再加入吸附柱中，12000rpm离心2min，即可得到高质量的基因组DNA。
全血基因组DNA提取试剂盒注意事项:
本试剂盒置于室温( 15 -25℃) 干燥条件下可保存12个月，更长时间的保存可置于2 -8℃。
常用的血液抗凝剂有EDTA、ACD和肝素等，需注意的是，如欲制备大分子量血液基因组DNA，可优先考虑使用ACD抗凝。一般不使用肝素抗凝，因为用肝素抗凝的血液提取的基因组DNA进行PCR扩增时，有PCR扩增抑制现象。
样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
4、如果试剂盒中的溶液出现沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响效果。
绝大多数哺乳动物全血中的红细胞无核，故在提取基因组DNA时需去除不含DNA的无核红细胞，以免影响白细胞裂解和DNA释放。如果处理的血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量减少为5-20μL，不需要再用红细胞裂解液来裂解红细胞。
洗脱缓冲液的体积最好不少于50μL，体积过小会影响回收效率:洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响；若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围)，pH 值低于7.0会降低洗脱效率。
