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痘苗病毒储液制备——噬斑分析测定滴度

2019.3.26
实验方法原理

经胰酶作用的系列稀释病毒储液常被用于感染适当的细胞系。经过几天的培养后,吸出培养基,将细胞用结晶紫染色。由于感染细胞变缩、变圆和脱落,形成直径 1~2 mm 颜色较淡的噬斑。

实验材料

生长良好的贴壁培养的单层 BSC-1 细胞病毒储液

试剂、试剂盒

0.1% 结晶紫(溶于 20% 乙醇)

仪器、耗材

6 孔 35 mm2 组织培养板

实验步骤

1. 胰酶消化汇片生长的单层 BSC-1 细胞(见「细胞培养实验」基本方案 1 步骤 4~7)。


2. 用血细胞计数器对细胞进行计数。


3. 将 5 × 105 个/孔 BSC-1 细胞加入 2 ml 完全 MEM-10 培养基在 6 孔的 35 mm2 组织培养板中培养,放入 5% CO2 加湿培养箱中 37°C 培养过夜,直到细胞生长至汇片。


4. 胰酶处理病毒储液(见基本方案 步骤 4)。


5. 用完全 MEM-2.5 培养基对胰酶处理后的病毒储液进行 9 次 10 倍系列稀释,注意每次稀释必须用新的吸管。


6. 吸出 BSC-1 细胞的培养基,用 0.5 ml 10-7、10-8、10-9 病毒稀释液感染细胞,每个稀释度感染两个孔。放入 CO2 培养箱中 37° C培养 1~2 h,每隔 15~30 min 轻轻摇动培养板,使病毒均匀分布,细胞保持潮湿。


7. 在每个孔中加入 2 ml 的完全 MEM-2.5 培养基,放入 CO2 培养箱中 37°C 培养 2 天。


8. 吸出培养基,每孔加入 0.5 ml 的 0.1% 结晶紫,室温下孵育 5 min。


9. 吸出结晶紫,使孔晾干。


10. 计算每孔中的噬斑数确定滴度,再乘以稀释倍数。

收起 
注意事项

每孔中有 20~80 个噬斑一般可以取得较好的结果,在测定滴度时,可以考虑用胰酶对病毒储液进行 1:1 稀释。


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