高架十字迷宫实验相关：-复方抗焦虑胶囊对急...（二）
2方法
2.1造模与分组大鼠单笼饲养,将大鼠随机分为空白组、模型组、胶囊低剂量组、中剂量组、高剂量组和阳性药物组,共6组,每组8只。其中低、中、高剂量组分别按0．75、1．5、3g·kg-1·d-1给予灌胃,DZP组给予1．0mg·kg-1·d-1灌胃,空白组和模型组灌服等容积的生理盐水,连续7d灌胃给药,d5、6、7除空白组外,其他各组在给予药物后进行急性应激造模。于d5各组灌胃后,参照文献[12]造模方法并对其进行相应改进,除空白对照组外的其余各组动物放进束缚装置,束缚管只限制大鼠的活动范围,对其呼吸并无抑制。束缚期间禁食禁水,束缚结束后恢复自由。每次刺激30min,每日1次,连续3d。d7给药束缚后,进行高架十字迷宫测试。
2.2对急性应激大鼠高架十字迷宫行为的影响迷宫测试前,将每只大鼠放入一个1125px×750px×375px塑料盒中,任其自由探究5min后迅速置于EPM的中央平台处,使其头部正对其中一个开放臂,采用红外线技术记录5min内大鼠的活动情况。每次测试完成后,用纸巾清除粪便,随后湿布蘸取酒精擦拭迷宫,继而用干布擦净后再进行下一只大鼠的测试。记录5min内动物进入开臂次数(openarmentry,OE)、闭臂次数(closearmentry,CE)及迷宫中央区内的次数及在开臂与闭臂内的运动时间。以进入开臂次数与总入臂次数的百分比(thepercentageofentriestotheopenarms,OE%)及在开臂内运动时间与开臂闭臂内的总时间的百分比(thepercentage oftimespentintheopenarms,OT%)代表抗焦虑作用指标。
2.3Westernblot检测急性应激大鼠脑皮层及海马ERK/CREB信号通路和BDNF的表达
2.3.1取材大鼠急性应激EPM实验结束后,立即断头处死,迅速取出大脑,于冰盘上快速分离出海马及皮层,随后于-80℃低温冰箱中冻存待用。
2.3.2组织裂解取约200mg海马或皮层组织,加入预冷的RIPA裂解缓冲液冰浴超声3×4s,4℃下12000r·min-1离心10min后吸取上清,采用Bradford法测定蛋白浓度后分装,立即95℃煮10min使蛋白变性,防止蛋白降解,煮后的蛋白可-20℃保存备用。
2.3.3Westernblot测定按Westernblot方法测定p-ERK1/2、ERK1/2、p-CREB和CREB蛋白与内参蛋白β-actin的表达,目的蛋白表达量与内参蛋白表达量的比值作为组织内蛋白的相对表达水平。Westernblot具体操作步骤如下:灌胶与上样:配制12%分离胶,加水封胶。分离胶凝固后将水尽量倒干净,用滤纸吸干分离胶残留的水,配制5%的浓缩胶,灌入制胶板,插入样品梳。待到浓缩胶凝固后,取出样品梳。加入50μg蛋白的上样样品至1．5mL离心管中,加入5×loadingbuffer上样缓冲液至终浓度为1×,加足量的runningbuffer后上样。
电泳:110V电压恒压电泳2h,电泳至溴酚兰即将跑出,即可终止电泳,停止电泳,拆开胶板,弃去浓缩胶,取出分离胶。
转膜操作:将PVDF膜在无水甲醇中浸泡至膜变成灰色透明,马上取出,放入去离子水中浸泡2min,随即放入预冷的1×转膜Buffer中浸泡,浸泡凝胶30min,滤纸、海绵20min,以1×转膜Buffer注满电转膜槽,接通电泳仪,以0．23mA电流恒流转膜1h。
免疫反应:将膜用TBST从下向上浸湿后,移至含有封闭液的保鲜盒中,室温下脱色摇床上摇动封闭1h后,4℃冰箱封闭过夜。将p-ERK1/2、ERK1/2、p-CREB、CREB与β-actin蛋白抗体以1×TBST稀释(1∶1000),将膜蛋白面朝下放于抗体液面上,4℃冰箱中孵育过夜。然后用TBST在室温下脱色摇床上洗3次,每次10min。同上方法二抗结合(1∶8000),室温下孵育1h后,用TBST在室温下脱色摇床上洗3次,每次10min,随后进行化学发光反应。
化学发光、显影、定影:取ECL发光工作液A和B两种试剂各500μL混合后,将膜蛋白面朝下与此混合液充分接触1min,将膜用保鲜膜包好后移至X光压片夹后,进入暗室曝光X片。曝光结束后,放入显影液中显影并定影,自来水冲去残留的定影液后,室温下晾干。
凝胶图像分析:将胶片进行扫描拍照,用凝胶图像处理系统分析目标带的分子量和净光密度值。
2.4统计学处理使用SPSS16．0软件对数据进行统计,计量数据使用x■±s表示。多组间比较采用(One-wayANOVA)单因素方差分析,两两比较方差齐时采用LSD检验法,方差不齐时采用Dunnett’sT3进行两两比较。
4讨论
束缚应激是一种有效的焦虑应激模型,通过数次强度、时间一致的束缚之后,可诱发动物出现排尿排便增多、修饰行为明显增多等行为指标,同时,还会影响体内激素及内分泌系统的变化,这些生理反应正是焦虑患者体内的生理变化。
生物学研究认为,调节正常和病理性焦虑状态的神经生物学通路异常是导致焦虑障碍的原因。而海马和皮层中ERK-CERB信号通路被认为可能与焦虑有关。研究表明,焦虑大鼠脑内p-ERK1/2含量明显增加,且PD98059阻断其磷酸化后,可产生明显抗焦虑的作用。Meller等发现,急慢性束缚应激可引起大鼠海马中p-ERK1/2的不同变化,大鼠急性束缚30min后,海马中p-ERK1/2含量明显增加,慢性束缚应激11d后,海马中p-ERK1/2含量明显减少。CREB转录因子的基因表达和对紧张、焦虑的潜在作用也被广泛研究,Lu等研究表明,28d慢性应激大鼠海马中p-ERK1/2与p-CREB的含量均明显减少。然而,也有研究表明14d压力诱导大鼠海马中的p-ERK1/2与p-CREB的含量均升高。通过以上结果可以发现,不同时间应激对p-ERK1/2与p-CREB的含量调控是双向的。本实验对大鼠采用3d急性束缚应激,束缚大鼠表现为易受惊吓、易激惹、被毛竖立;束缚组大鼠在高架十字迷宫模型中表现为排尿、排便次数增多,呈现焦虑状,且与空白组相比,开臂时间与次数百分比明显减少,提示3d造模可使大鼠产生焦虑。
因此,本实验对大鼠海马和皮层中p-ERK1/2与p-CREB的含量进行测定,以明确复方抗焦虑胶囊对3d急性束缚应激模型大鼠ERK-CERB信号通路的调节方式。实验结果表明,束缚应激会增强ERK-CREB通路的活化,导致磷酸化ERK和磷酸化CREB含量的增加,而地西泮和复方抗焦虑胶囊会抑制ERK-CREB过度的磷酸化,提示复方抗焦虑胶囊可能通过影响ERK-CREB信号通路产生抗焦虑作用。
BDNF是最早发现的神经营养因子,自1989年其cDNA结构被阐明以来,对BDNF的分布及功能有了广泛的深入研究。研究发现,BDNF可以调节神经元和突触的可塑性,对中枢神经元的增殖和修护有巨大的意义,而焦虑症的治疗也与神经元和突触的形成有密切关系。本实验结果表明,应激模型导致大鼠皮层及海马中BDNF明显减少,而复方抗焦虑胶囊可以明显抵消这种减少,从而对皮层和海马产生保护作用。
ERK-CREB通路与BDNF蛋白的表达关系密切,ERK-CREB通路的变化可以影响BDNF蛋白的表达。BDNF蛋白参与急性焦虑信号。实验结果表明,复方抗焦虑胶囊对ERK-CREB通路和BDNF蛋白的表达都有明显的影响,表现为抑制ERK-CREB通路的磷酸化与增加BDNF的表达,因此提示胶囊可能通过调节它们的相互反应而发挥其抗焦虑作用。
综上所述,本实验结果表明复方抗焦虑胶囊对急性应激模型大鼠具有一定的抗焦虑作用,并且其作用机制可能与影响ERK-CREB信号通路及BDNF的表达有关系,但它们之间深层次的相互影响有待于进一步研究。
