乳糜微粒的检查过程
1、免疫透射比浊法：
（1）标本应是及时分离的空腹血清，可密封存放在2～6℃冰箱中，1周内测定，-20℃可存放半年。
（2）用全自动分析仪时，应根据不同仪器设计参数，合理选择抗原抗体比例及反应时间。也可作速率法散射比浊测定CM如用Beckman比浊仪ICS或protein array system）。
（3）手工法所用仪器：精密光度计，具有340nm滤光片（或分光器），样品池体积以0.5ml为宜（为节省抗血清），最好用流动杯，样品稀释最好用稀释器、经校正的加样器。
（4）标本处理：将血清标本及质控血清各用样品稀释剂作1：200稀释，即先作1：20稀释（5.Oμl血清+95μl稀释剂）后，再作1：10稀释（多余的1：20血清作测定apoB用）。
混匀后，25～37℃放置30min，在波长340nm比浊，根据U-UB的A值，在标准曲线上读出结果。
本法批间CV<5%。
（5）校准曲线：在手工与半自动操作中每批测定均需作校准曲线，可将校准血清稀释成1：100、1：200、1：300和1：400等4种浓度，与标本同样操作，根据定值计算出每个标准管CM浓度，以浓度（X）与其相应的A值（Y）作图（用直线回归计算），基本上成直线，但在Y轴上有一定截距，所以不能用单点标准。操作准确时浓度与A值的相关系数应在0.985以上。
如有高、中、低浓度的三份校准血清时，可与标本同样操作，做三点定标，也可作五点定标（即高、中浓度的血清等量混合，及中、低浓度的血清等量混合，成为另两份校准血清）。
本法线性范围：0.4～2.5g/L。
2、火箭电泳法：
（1）浇板：每板用10g/L琼脂糖10ml，沸水浴中融化，混匀，冷至50～55℃时加入CM抗血清50μl，apoB抗血清8μl（用量视抗血清效价而定），迅速混匀后倒在预置在水平台上的玻璃板上，冷后放在4℃，20min后打孔，孔在板的阴极端，孔径3mm，孔间距至少5mm，孔容量5μl。把板放入电泳槽，用滤纸搭桥。
（2）稀释抗原：用0.15mol/L NaCl液将校准血清稀释成1：100，1：150，1：200，1：300，及1：400（作校准曲线之用），血清标本按1：200稀释，放4℃冰箱不得超过3天。
（3）加样：在低电流状态（10mA/板）将稀释好的定值血清及标本分别吸取5μl（准确），加入琼脂糖凝胶加样孔内。每板都要做一系列标准。
（4）通电：稳流24mA/板，端电压6～8V/cm，以流水冷却使琼脂糖保持15℃，电泳3～4h。
（5）脱杂蛋白及制干胶膜：电泳后的琼脂糖板浸泡在0.15mol/L NaCl中30min，将胶膜托置于聚酯薄膜上，用多层滤纸在轻轻加压下吸干胶内水分，然后将滤纸、胶膜与聚酯膜三者一起自然干燥，或用热吹风器吹干，干后胶膜会自然与滤纸及聚酯膜分开。
（6）染色：将琼脂糖胶膜平铺浸泡于染色液内20～30min。
（7）脱色：用脱色液浸泡已染色的胶膜至火箭峰清晰，背景基本无色。可在水中用两片玻璃纸将胶膜夹住，晾干后可长期保存。也可以用流水浸泡脱色至背景干净。
附注：
①抗原稀释倍数与抗血清用量的选择，应以火箭峰清晰、校准曲线斜率适中并成直线为宜。本法同时测定apoA-Ⅰ与apoB，应调整两种抗血清用量，使二者峰高有区别，apoB峰高不小于1cm。
②不同种类来源的抗血清（如兔与羊），在等效价的情况下进行试验，结果会有差异。apoA-Ⅰ测定以兔抗血清为好。用兔血清时峰形尖细，而羊血清所产生的峰粗，峰尖圆钝，有时在峰顶前出现虚影。校准血清所作校准曲线斜率也不同。但不论用何种抗血清，定量结果差别不大。
③在一定条件下电泳，不同稀释度校准血清的峰高不会有明显变动，校准曲线斜率基本一致。如标本峰高超出校准曲线范围时，应调整标本稀释倍数后重测。板间CV通常小于5%。
④火箭电泳结果可以用染色法或直接肉眼观察可见的火箭峰。前者用标本少，节省抗血清，但如适当增加标本及抗血清用量，不染色更为方便。所用琼脂糖应为标准电渗或低电渗的，凝胶中加入适量葡聚糖或聚乙二醇可使火箭峰更清晰。
⑤火箭峰的测量可以计算面积或峰高，面积是峰高乘以峰宽（峰半高处的宽度）。测量精度最好能达0.1mm。须用机械或电子放大设备。标准曲线范围内峰高以1～4cm为宜。
⑥本法适用于少量标本分析。也适用于apoAⅡ、CⅠ、CⅡ、CⅢ、D、E及Lp（a）测定。
