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大肠杆菌杂交及基因定位实验

2019.8.09

一、原理

大肠杆菌染色体呈环状。高频重组菌株(Hfr)的染色体上整合有F因子,当Hfr细菌与F细菌细胞发生接合(即杂交)时Hfr细胞(供体菌)的染色体从Hfr细胞向F细胞内转移。由于染色体的转移具有一定的方向性,并且可以随时中断,因此根据结合后F细菌(以重组子形式选出)中Hfr细菌染色体基因出现次数的多少,即可得知基因转移的先后顺序,也就是说基因在染色体上排列的顺序。转移时,靠近转移起始点的染色体基因进入F细胞的机率大,重组频率高,远离转移起始点的基因进入F细胞的机会少,重组率低,F因子大部分位于转移起始点相对的一端(末端)。因此转移的频率很低。只有当接合时间很长,足以使整个染色体转入F细胞(受体)时,才会使F细胞转变为Hfr或F状态。

基因定位时首先要从Hfr与F细菌的混合培养物中筛选出某一Hfr与F细菌基因(选择性标记基因)已经发生了重组的细菌(重组子),然后在这些重组子中逐个测定其它的Hfr基因(非选择标记)出现的次数。Hfr菌株染色体上的选择性标记应位于染色体前端,这样才能保证以100%的频率出现在重组子中。选择性标记之后的基因,则以低于100%的频率出现在重组子中。F细胞的选择性标记应起到排除Hfr菌生长的作用(即反选择)。本实验使用的F菌株为Strr, Hfr菌为Strs,借此可排除Hfr菌的生长。另一方面为保证Hfr基因有机会出现在重组子中,反选择性标记应位于染色体后端。为了使Hfr菌株有较高的接合频率,F细菌应该过量以保证每一个Hfr细菌都能与F细菌接合(10~20:1)。


二、目的

通过本实验,了解大肠杆菌杂交及其基因在染色体上的排列方式,并掌握大肠杆菌接合及染色体基因定位的原理与方法。


三、材料、试剂与器具

1、受体菌:FD1004 Fleu purE trp his metA ilv arg thi ara lacY xyl mtl galT strr rifr
2、供体菌:CSH60 Hfr sup strs

3、生理盐水:0.85%NaCl

4、10×A
缓中液。
5
、基本培养基。
6、LB
培养基。
7、选择培养基[B]—[G]:基本培养基加氨基酸(表1-2
)。
8、培养皿、三角瓶、吸管、灭菌牙签、摇床、酒精灯、接种环。

四、操作步骤

1、第一天傍晚,分别接一环供体菌和受体菌于5ml LB培养液中,37℃振荡培养10-12小时。
2
、第二天清晨,各取1ml过夜培养物,分别加入到2个盛有5ml LB培养液的250ml三角瓶,37℃振荡培养2-3小时。
3
、吸取0.5ml供体菌和4.5ml受体菌,加入到一个无菌的250ml三角瓶中混合,置37℃摇床上培养100分钟。
4、将上述接合菌液用生理盐水稀释100、10-1、10-2倍。

5、各吸取0.1ml稀释液涂布在选择培养基[A]平板上,每一种稀释液涂布2个平板。同时将供体菌及受体菌分别吸取0.1ml涂布在[A]上作对照,每种各2个平板。此后均于37℃条件下培养48小时。
6
、第四天,1)观察和计数选择培养基[A]平板上接合组和对照组的菌落生长状况;2)在与平皿相同大小的白纸上画100个小格,将圆片贴于选择培养基[B]、[C]、[D]、[E]、[F]和[G]平板的底部,然后用灭菌牙签从接合组选择培养基[A]平板上随机挑选100个菌落,对号点种在选择培养基[B]、[C]、[D]、[E]、[F]和[G]平板的100个小格中;3)将所有平板置于37℃箱内培养48小时。
7、第六天,统计在各种选择平板上生长菌落的数目,记录。并绘制出基因顺序图。

选择性培养基附加成份表

培养基
编号

选择性
标记

基本
碳源

基本培养基(A)中补充物质

str

rif

arg

ilv

met

leu

ade

trp

his

A

Met leu str

葡萄糖

B

(met leu str)arg

葡萄糖

C

(met leu str)trp

葡萄糖

D

(met leu str)his

葡萄糖

E

(met leu str)lac

乳糖

F

(met leu str)gal

半乳糖

G

(met leu str)rif

葡萄糖



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