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小鼠肝细胞原代培养实验——胰酶消化法

2019.4.05

小鼠肝细胞原代培养可用于:(1)用于细胞保种;(2)用于分子生物学研究;(3)用于基因治疗研究。

实验方法原理

将小鼠的肝细胞从机体中取出,经胰酶、螯合剂(常用EDTA)处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖。 

实验材料

小鼠

试剂、试剂盒

DMEM无血清DMEM培养基胰酶PBS

仪器、耗材

饭盒纱布剪子镊子烧杯平皿研磨玻片滤网离心管6孔培养板吸管移液管手套微量加样器

实验步骤

1. 将小鼠断颈致死,置75%酒精泡2-3秒钟,取肝脏,置于盛有PBS的平皿中。


2. 剔除脂肪、结缔组织、血液等杂物,转移到另一个盛有PBS液的平皿中。


3. 用手术剪将脏器剪成小块(大小约1mm2),玻片研磨,转到离心管,离心(1 000 rpm,5 min)。


4. 视组织或细胞量加入5-6倍(3-5 ml)胰酶,37℃中消化20分钟,每隔5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细胞分离。


5. 加入3-5 ml含血清的培养液以中止胰酶消化作用。


6. 用100目孔径滤网滤过,除去未消化的大组织块。


7. 再次离心5 min,弃上清液。


8. 加入无血清培养液5 ml,冲散细胞,再离心一次,弃上清液。


9. 加入含血清的培养液1-2 ml(视细胞量),血球计数板计数。


10.  将细胞调整到5×105/ml左右,转移至6孔培养板中,37℃下培养。

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注意事项

1. 自取材开始,保持所有组织细胞处于无菌条件。细胞计数可在有菌环境中进行。


2. 在超净台中,组织细胞、培养液等不能暴露过久,以免溶液蒸发。


3. 凡在超净台外操作的步骤,各器皿需用盖子或橡皮塞盖住,以防止细菌落入。


4. 操作前要洗手,进入超净工作台后要用75%酒精或0.2%新洁尔灭擦拭手。试剂瓶口也要擦拭。


5. 点燃酒精灯,操作在火焰附近进行,耐热物品要经常在火焰上烧灼。金属器械烧灼时间不能太长,以免退火,且冷却后才能夹取组织。吸取过营养液的用具不能再烧灼,以免烧焦形成碳膜。


6. 操作动作要准确敏捷,但又不能太快,以防空气流动,增加污染机会。


7. 不能用手触及消毒器皿的工作部分,工作台面上的用品摆放要布局合理。


8. 瓶子开口后要尽量保持45°斜位。


9. 吸溶液的吸管等不能混用。

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