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“质粒DNA超速离心分离”的补充说明

2020.7.14

一)用CSCL-E.B.梯度分离大肠杆菌中质粒DNA、染色体DNA、蛋白质及RNA的详细步骤

(1) 溶液制备:

溶液Ⅰ:50mM葡萄糖,10mM EDTA,25 mM Tris-HCL (PH8.0)。

溶液Ⅱ:0.2M NaOH,1%SDS。

溶液Ⅲ:3M醋酸钠(PH4.8)

TE缓冲液:10 mM Tris-HCL (PH7.4),2mM EDTA

(2)E.coli培养液1升。(实验应用时可按比例增加或减少)

(3)将1L培养液在4000rmp(约20000xg),5℃离心20分钟,得到细菌沉淀。

(4)用100ml冷的溶液Ⅰ洗沉淀,再离心,4000rmp,5℃离心20分。

(5)用20ml冷的溶液Ⅰ将第二次沉淀调成均匀悬浮液。

(6)每ml加入2mg溶菌酶,并在0℃冰中放置10分钟。

(7)加入40ml溶液Ⅱ,轻轻搅拌后在冰浴中置5分钟。

(8)加入30ml溶液Ⅲ,在冰浴中放置20分钟,使蛋白质大部分沉降。

(9)在高速冷冻离心机上,用角式转头10000rmp(约10000xg)离心15分钟,5℃。

(10)小心地倒去上清(不搅拌沉淀)。在沉淀中加入55ml异丙醇(Isopropanol),即得到粗制的质粒DNA溶液。

(11)粗制DNA液在-20℃。在重力状态下沉淀15分钟以上,再在12000rpm(15000xg)4℃离心5分钟,倒去上清液。

(12)真空中抽去异丙醇,沉淀中加入18ml经消毒过的TE缓冲液,在沉淀溶解后,再加入0.65ml 1%的E.B.(共约35ml-40ml)。

(13)以上溶液每ml加入分析纯CSCL1.0克,并使其完全溶解,检测溶液折射率应为1.3890(ρ=1.587)

(14)用以上溶液作质粒DNA的超速离心分离,用12ml,PA密封管,角转头100000xg36hr,20℃,小倾角转头78000rpm x 4hr或垂直管转头350000xg 6hr,20℃

(15)离心后,在紫外光下(最好用300nm紫外光,对DNA损伤最小),可显示DNA带(即线性DNA带与质粒DNA带),RNA沉淀底部,蛋白质浮在顶部。

(16)用切管器切去管上部,抽出质粒DNA(管中部附件,有二个带,上部是线性DNA带,下部是质粒DNA带)。

也可以直接从侧壁穿刺抽出质粒DNA

最好是用梯度仪用上取法自上而下抽出后经流动池测OD,绘出ABS曲线,再分部收集。

(17)从溶液中抽提E.B.用透析法或脱盐柱去CSCL。

(18)如果不用E.B.可以用三氟醋酸铯作为梯度介质。但不可用E.B.时,分离后看不出质粒DNA带位置,三氟醋酸铯离子吸收紫外线,使分析更困难,此法不常用。

二) E.B.(ethidium bromide,溴化乙锭)的作用

(1)降低了DNA在CSCL中浮密度,以SV 40 DNA为例,无E.B.时,其在CSCL中浮密度为1.71,有E.B.时降为1.575。减少了CSCL使用量,缩短了离心时间,降低了离心成本。

(2)使质粒DNA纯样品带在紫外光照射下显色,从而在超速分离后易于识别Plasmid DNA带的位置,便于抽出。

(3)E.B.的存在使质粒DNA与线粒体DNA在CSCL中的浮动密度差减少。使二个带靠得较近。但用超离心分离方法,还是可以将二种DNA分开。(线性DNA与质粒DNA在CSCL中浮密度分别为1.532和1.575)。


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