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影响酶促反应的因素——温度、pH和激活剂与抑制剂

2020.9.07

实验原理

酶作为生物催化剂与一般催化剂一样呈现温度效应,酶促反应开始时,反应速度随温度升高增快。达到最大反应速度时的温度称为某种酶的最适温度。由于绝大多数酶是有活性的蛋白质,当达到最适温度后,继续升高温度,引起蛋白质变性,酶促反应速度反而逐步下降,以致完全停止。酶的最适温度不是一个常数,它与作用时间长短有关。测定酶活性均在酶促反应最适温度下进行。大多数动物来源的酶最适温度为37-40℃,植物来源的酶最适温度为50-60℃。酶的催化活性与环境pH有密切关系,通常各种酶只在一定pH范围内才具有活性, 酶活性最高时的pH, 称为酶的最适pH。高于或低于此pH时酶的活性逐渐降低。酶的最适pH不是一个特征物理常数,对于同一个酶,其最适pH因缓冲液和底物的性质不同而有差异。在酶促反应过程中,抑制剂对酶的抑制作用可分为可逆抑制和不可逆抑制。可逆抑制有根据抑制剂和底物的关系分为三种类型:竞争性抑制,非竞争性抑制和反竞争性抑制。在本实验中,胰蛋白酶的最适温度为37℃,最适pH值为8.1。胰蛋白酶的抑制剂为苯甲脒,其抑制方式为竞争性抑制。

试剂和器材

一、试剂

5%三氯醋酸溶液。

1mmol/L苯甲脒溶液:称取19.25g苯甲脒,用少量水溶解,定容至100mL。

1%酪蛋白溶液:取1g酪蛋白,加0.1 mol/L氢氧化钠溶液10mL、水40Ml, 置60℃水浴加热至溶解,放置室温后,加水稀释成100mL, 并调至pH 8.0。

0.1mol/L硼酸缓冲液:

A液:0.1mol/L 硼酸(H3BO3)

称取6.18g H3BO3溶于1000mL水中。

B液:0.025mol/L 硼砂(Na2B4O7?10H2O)

称取9.54g硼砂(Na2B4O7?10H2O)溶于1000mL水中。

PH7.4硼酸缓冲液:90mL A液+10mL B液

PH8.0硼酸缓冲液:70mL A液+30mL B液

PH9.0硼酸缓冲液:20mL A液+80mL B液

二、材料

胰蛋白酶溶液:50-200μg/mL,用0.1 mol/L, pH8.0硼酸缓冲液配制。可用粗提的猪胰蛋白酶,用量根据实际测的比活值而定。

三、仪器

试管1.5×15cm(×19);移液管1mL(×7),2mL(×3),5mL(×5);量筒 100mL(×1),

恒温水浴;冰浴(0℃);白瓷板;胶头滴管。

操作方法

一、温度对酶活力的影响

取3支 试管,按下表操作:

操作项目

管号



1

2

3


胰蛋白酶溶液(mL)

0.2

0.2

0.2

蒸馏水(mL)

0.8

0.8

0.8

温度预处理5min(℃)

0

37

70

1%酪蛋白溶液

1.0

1.0

1.0

混匀后,置各相应温度保温10min,加入3.0mL 5%三氯醋酸溶液终止反应。




A253




空白管:先在试管中加入1.0mL1%酪蛋白溶液和3.0mL 5%三氯醋酸溶液,摇匀后,再加入0.2mL酶液, 0.8m 蒸馏L水,在37℃保温10min。

将样品管和空白管分别离心,取上清液于280nm处测定各管的吸光值,并比较之。

二、pH对酶活力的影响

取3支试管,按下表操作:

 

操作项目

管号



1

2

3


胰蛋白酶溶液(mL)

0.2

0.2

0.2

PH7.4硼酸缓冲液(mL)

0.8

0

0

PH8.0硼酸缓冲液(mL)

0

0.8

0

Ph9.0硼酸缓冲液(mL)

0

0

0.8

混匀,37℃ 水浴中保温2min




1%酪蛋白溶液(mL)

1.0

1.0

1.0

迅速混匀,37℃水浴中继续保温10min,加入3.0mL 5%三氯醋酸溶液终止反应。




A253




空白管:先在试管中加入1.0mL1%酪蛋白溶液和3.0mL 5%三氯醋酸溶液,摇匀后,再加入0.2mL酶液, 0.8mL蒸馏水,在37℃保温10min。

将样品管和空白管分别离心,取上清液于280nm处测定各管的吸光值,并比较之。

三、抑制剂对酶活力的影响

取3支试管,按下表操作:

操作项目

管号


1

2


1%酪蛋白溶液(mL)

1.0

1.0

1mmol/L苯甲脒溶液(mL)

0

0.1

蒸馏水(mL)

0.8

0.7

混匀,37℃ 水浴中保温2min



胰蛋白酶溶液(mL)

0.2

0.2

迅速混匀,37℃水浴中继续保温2min,加入3.0mL 5%三氯醋酸溶液终止反应。



A253



空白管:先在试管中加入1.0mL1%酪蛋白溶液和3.0mL 5%三氯醋酸溶液,摇匀后,再加入0.2mL酶液, 0.8mL蒸馏水,在37℃保温10min。

将样品管和空白管分别离心,取上清液于280nm处测定各管的吸光值,并比较之。

注意事项

(1)由于胰蛋白酶活力不同,因此实验1、2、3应随时检查反应进行情况。如反应进行得太快,应适当稀释酶液;反之,则应减少酶溶液的稀释倍数。

(2)注意不要在检查反应程度时使各管溶液混杂。


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