关注公众号

关注公众号

手机扫码查看

手机查看

喜欢作者

打赏方式

微信支付微信支付
支付宝支付支付宝支付
×

外显子捕获与扩增(二)

2020.8.10

材料


缓冲液与溶液

按合适比例稀释贮存液。


无二价阳离子的磷酸缓冲液(PBS)


酶及缓冲液


胰酶-EDTA 溶液


核酸与寡核苷酸


DNA

用于转染的质粒 DNA 制备见本方案阶段 1, 步骤 10~12。


用作对照的质粒载体(步骤 3)


培养基


含 10% 热灭活胎牛血清的 Dulbecco's modified Eagle's 培养基(DMEM)


离心转头


Sorvall H1000B 转头或等同规格转头


专用设备


电穿孔转染设备以及 0.4 cm 宽的电转染槽


组织培养平皿(100 mm)


宽口加样器头


细胞与组织


COS-7 细胞

细胞须在含 10% 热灭活胎牛血清的 DMEM 培养至 75%—85% 致密。关于细胞的处理细节,包括胰酶消化,见 Spector 等(1998b)。


方法


1. 用无二价阳离子的 PBS 洗涤单层 C0S-7 细胞。通过胰酶-EDTA 处理将细胞从平皿表面消化下来。4°C、250 g(Sorvall H1000B 转头上相当于 1100r/min) 离心 10 min 回收细胞。

重要:在整个过程中须保持 COS-7 细胞处于预冷状态。

关于细胞胰酶消化细节见 Spector 等(1998b)


2. 将用于转染的 DNA 样品溶于无二价阳离子的 PBS 并调整至 100ul。

转染所需的 DNA 量应按第 16 章,方案 5 进行优化,


3. 用 700ul 无二价阳离子的 PBS 重悬 4X106COS-7 细胞。在预冷的电转染槽中混合细胞与 DNA(槽内宽 0.4 cm)。将混合物放置冰上 10 min。

PBS 体系中如含二价阳离子,将导致电转染时产生电弧,可破坏电穿孔仅。

确保应用空载体 DNA 进行电转化,作为实验对照。


4. 小心重悬细胞,按 1.2kV(3kV/cm) 和 25uF 进行电穿孔转染实验。迅速将电转槽重置于冰上,并放置 10 min。

电穿孔转染条件按第 16 章,方案 5 描述的方法进行优化。


5. 用宽口加样器头将 1x106 的电转染后的细咆转入 100 mm 的组织培养平皿中,每个平皿已加入 10 ml 预热至 37°C 的含 10% 热灭活胎牛血清的 DMEM 培养基。在设定 37°C、5%~7%CO2 及一定湿度的培养箱中培养 48~72 h。


阶段 3:mRNA 的提取


材料


缓冲液与溶液

按合适比例稀释贮存液。


DEPC 处理水


乙醇


NaCl(5mol/L)



酚:氯仿


无二价阳离子的磷酸缓冲液(PBS)


SDS(5%m/V)


TMK 缓冲液

10 mmol/LTris-HCl(pH7.5)

10 mmol/LKCl

1 mmol/LMgCl2

Triton X-100(10%V/V) 或 Nonidet P-40(4%,V/V)


离心转头


Sorvall H1000B 转头或等同规格转头


专用设备


细胞刮子或橡胶刮


聚苯乙烯离心管(15 ml), 冰上预冷至 0°C


细胞与组织


分别经重组 pSPL3 和非重组 pSPL3 转染的 COS-7 细胞


方法


1. 用冰预冷的不含钙、镁离子的 PBS 洗涤平皿中的转染 COS-7 细胞三次。洗涤过程中将平皿保持在冰上。


2. 每个平皿中加入 10 ml 预冷的 PBS。保持平皿在冰上,小心的将细胞刮除下来。


3. 将细胞悬液转入预冷的 15 ml 聚苯乙烯离心管中。

使用透明的聚苯乙烯离心管,有利于步骤 8、9 中不含细胞核的胞浆的回收。


4.4°C、300 g(Sorvall H1000B 转头上相当于 1200r/min) 离心 8 min 回收细胞。


5. 尽可能倾去上清,并用加样器除去残存的上清。


6. 在 300ulTFK 缓冲液中重悬 1X106 至 2x106 的 COS 细胞,冰上放置 5 min。


7. 加入 15ul 的 10% 的 Triton X-100 或 4% 的 Nonidet P-40, 冰上放置 5 min。

加入非离子去污剂可导致质膜的轻微破解而核膜保持完整。


8.4°C、500 g(Sorvall H1000B 转头上相当于 1500r/min) 离心 5 min 沉淀细胞核。


9. 将上清移入预冷的 1.5 ml 小离心管中。

重要:移取上淸时应异常小心,切不可触及细胞核沉淀。如核膜破裂会导致基因组 DNA 污染,样品将非常黏期而难以吸取。


10. 加入 20ul 的 5%SDS 和 300ul 的酚,剧烈振荡后最大速度离心 5 min,样品将分为有机相和水相。


11. 将水相移入含 300ul 酚: 氯仿的 1.5 ml 小离心管中,剧烈振荡后室温最大速度离心 3 min 进行分相。


12. 移取上层的水相至预冷的 1.5 ml 小离心管中,加入 120 的 5mol/LNaCl 和 750ul 的乙醇。-20°C 放置 2~3 h 或-80°C 放置 30 min 以沉淀 RNA。

核酸在乙醇中比在水中更稳定。如长期保存,RNA 应置于乙醇中-80°C 冻存(见第 7 章,方案 1 结尾部分的专栏“RNA 的保存")。


13.4°C、最大速度离心 10 min 回收 RNA。


14. 弃上清并用 70% 乙醇洗涤沉淀。空气干燥后,将沉淀重悬于 20 g 的 DEPC 处理水中。


阶段 4: 反转录 PCR


材料


缓冲液与溶液

按合适比例稀释贮存液


10x 扩增缓冲液


氯仿


DEPC 处理水


DTT(lmol/L)


dNTP 溶液,每种核苷酸浓度为 1.25 mmol/L



RNase 抑制剂


酶及缓冲液


Bst XI


EcoR V


Mo-MLV 反转录酶


Taq DNA 聚合酶


DNA 尿嘧啶糖基酶(1 单位/ul)




推荐
热点排行
一周推荐
关闭