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GST融合蛋白表达与纯化的实验步骤与注意事项（二）

2021.5.22

7、转化BL21(DE3)pLysS菌株检测GST融合蛋白的表达

(1)冰上融化BL21(DE3)pLysS感受态细胞(天根)

(2)2 ml离心管中，加入25μl BL21+ 3μl质粒(300-500ng)，混匀(质粒≤感受态1/10)

(3)冰上放置30min

(4)42°C，90s

(5)冰上放置2-3min

(6)加入300μl LB(无抗生素)(相当于菌体10倍体积的LB)，37°C，250rpm，1 h

(7)4000rpm，2min，弃上清，其余混匀以后涂平板(Ampr)，37°C，过夜(16 h)

(8)挑单克隆菌落，5ml LB(Ampr)，37°C，250rpm，过夜(16 h)

()稀释10倍、20倍、50倍测定OD600

()选择合适的稀释倍数，5ml菌液，37°C，250 rpm，1 h，测定OD600

(7)取100μl菌液加入5ml LB(Ampr)(50倍稀释)，37°C，250rpm，过夜(16 h)

(8)取500μl菌液加入5ml LB(Ampr)(10倍稀释)(其余菌液4°C保存)，测OD600

(9)37°C，250 rpm，2 h(OD600：0.6-0.8)，测OD600

(10)室温放置20 min(摇床降温，30°C)

(11)取100μl作为诱导前对照，冰上放置

(12)菌液中加入IPTG，终浓度0.5-1 mM

(13)30°C，250 rpm，2 -4h(可做时间梯度)，测OD600

(14)取100μl作为诱导后对照，连同诱导前菌液，12000rpm，离心2min，加入50μl 1×SDS上样缓冲液

(15)取4ml菌液，12000rpm，离心2min，收集到2ml离心管中

(16)加入1ml GST裂解缓冲液重悬菌体

(17)超声破碎细胞：超声20s，间隔10s，共3-5次，超声强度200-300W(冰浴)

(18)超声后菌液换入一个新1.5ml离心管，4°C，12000rpm，离心5min

(19)超声后上清：取25μl上清，加入25μl 2×SDS上样缓冲液(其余上清-80°C保存)

(20)超声后沉淀：沉淀加入1ml GST裂解缓冲液重悬，取25μl，加入25μl 2×SDS上样缓冲液(其余沉淀-80°C保存)

(21)将四个样品煮沸3min，12000rpm，离心5min

(22)8-10%SDS-PAGE，30μl上样，顺序：诱导前菌体、诱导后菌体、超声后上清、超声后沉淀

(23)考马斯亮蓝染色

[注意]

(1)菌液OD值小于1即可

(2)诱导时间最好做一个梯度，2-6h

(3)诱导温度适当摸索，24°C、30°C

(4)IPTG浓度可做梯度，1mM

(5)超声条件可视实际情况改变，只要使细菌裂解充分即可，即菌液清亮不粘稠

8、测序确认

测序引物：pGEX-3通用引物

测序样品：过夜菌1ml;质粒(浓度大于50ng/μl，10μl)

9、中提质粒(Promega)

10、表达纯化GST融合蛋白

(1)已经转化的菌液，或者重新转化BL21(DE3)pLysS

(2)活化：取20μl菌液加入11ml LB(Ampr)(500倍稀释)，37°C，250rpm，过夜(16 h)

(3)取10ml菌液加入100ml LB(Ampr)(10倍稀释)(剩余菌液4°C保存)

(4)37°C，250 rpm，1 h 10 min-1 h 20 min，OD600 0.6-0.8(OD600小于1.0即可)

(5)取1ml菌液作为诱导前对照，冰上放置

(6)加入IPTG，终浓度1 mM

(7)30°C，250rpm，诱导适当时间(预实验确定)

(8)取1ml菌液作为诱导后对照，连同诱导前菌液，12000rpm，离心2min，收集菌体，加入100μl 1×SDS上样缓冲液

(9)其余菌液，分为两份，倒入50ml离心管，5000rpm，离心20 min，收集细胞

(10)每管加入8-10ml GST裂解缓冲液重悬菌体，转移小烧杯中(无气泡)

(11)超声破碎细胞：超声3s，间隔10s，40次左右，超声强度200-300W(冰浴)

(12)将超声后菌液转移到50ml离心管中，4°C，13000rpm，离心20-30min

(13)将上清转移到1个50ml离心管中，取出50μl，加入50μl 2×SDS上样缓冲液(其余上清-80°C保存)

(14)将沉淀加入16-20ml GST裂解缓冲液(或PBS)重悬，取出50μl，加入50μl 2×SDS上样缓冲液(其余沉淀-80°C保存)

(15)将四个样品煮沸3min，12000rpm，离心5min

(16)8-10%SDS-PAGE检测诱导、超声是否合适，30μl上样，顺序：诱导前菌体、诱导后菌体、超声后上清、超声后沉淀

(17)考马斯亮蓝染色

(18)混匀glutathione sepharose beads(4B)(mixed slurry)，取200μl加入15ml离心管中(2份)

(19)加入10ml PBS，混匀，3000rpm，离心3min，弃上清

(20)加入超声后上清液，4°C轻柔摇荡60分钟(或过夜)(横放)

(21)4°C，3000rpm，离心3min

(22)10ml GST裂解缓冲液洗涤2次(冰上)

(23)10ml TBS(含5mM MgCl2、1mM DTT)洗涤2次(冰上)

(24)弃上清，加入1倍柱床体积的TBS(含5mM MgCl2、1mM DTT、50%甘油)，混匀

(25)取悬液测定蛋白浓度或SDS-PAGE

(26)-20°C保存beads

11、GST-Pull-down

(1)10cm培养皿中，未处理的细胞或者转染的细胞(3-5μg质粒转染10cm培养皿，Cos-7、293T或者其他细胞，转染24h)

(2)加入1ml 细胞裂解缓冲液，细胞铲刮下细胞(冰上)

(3)将裂解液收集到1.5ml离心管中，振荡30s，冰上放置5min，重复2-3次，充分裂解细胞

(4)4°C，12000rpm，离心15min，收集上清

(5)测定蛋白浓度，取1mg总蛋白做GST-Pull-down?

(6)留30μl作为input对照(input与Pull-down蛋白量约为1/10)

(7)其余溶液，加入20μl glutathione sepharose beads(PBS洗涤过)，4°C，轻柔振荡20min

(8)12000rpm，离心3min

(9)收集上清，分为两份，一份加入1-15μg GST结合的beads，另一份加入等量 GST-融合蛋白结合的beads，4°C，轻柔振荡60min

(10)3000rpm，离心3min，回收上清

(11)1ml 细胞裂解缓冲液洗涤3次

(12)弃尽上清，加入25μl 2×SDS上样缓冲液

(13)煮沸3min，12000rpm，离心3min

(14)SDS-PAGE，上样顺序：细胞裂解液input、x、GST、x、GST-融合蛋白(x：LSB)

(15)考马斯亮蓝染色或免疫印迹

[附录]

GST裂解缓冲液(前四个组分配好之后4°C保存，DTT和蛋白酶抑制剂现用现加)

配方一

	500ml贮存液	10ml工作液
150mM NaCl	15 ml 5M NaCl	10ml贮存液
20mM HEPES pH7.5	20ml 0.5M Hepes pH7.5
5mM MgCl₂	10ml 1M MgCl₂
1% TritonX-100	5ml 100% Triton-X 100
1mM DTT		10μl 1M DTT
1mM PMSF		34μl 0.3M PMSF
inhibitor cocktail		10μl inhibitor cocktail

配方二

	500ml贮存液	10ml工作液
200mM NaCl		10ml贮存液
25mM HEPES pH7.5
2mM DTT		20μl 1M DTT
1mM PMSF		10μl 1M PMSF
inhibitor cocktail		10μl inhibitor cocktail

TBS(含5mM MgCl2、1mM DTT)

	500ml 贮存液
150mM NaCl	15ml 5M NaCl
20mM Tris pH7.6	10ml 1M Tris pH7.6
5mM MgCl₂		0.5M MgCl₂
1mM DTT		1M DTT

常用IP细胞裂解液

	500ml贮存液	10ml 工作液
50mM Tris-HCl, pH7.5	25ml 1M Tris-HCl, pH7.5
150mM NaCl	15ml 5M NaCl
2mM EDTA	2ml 0.5M EDTA
0.5% NP40	25ml 10% NP40
0.5% Triton X-100	25ml 10% Triton X-100
0.5mM DTT	2.5ml 1M DTT
1mM PMSF		100μl 100mM PMSF
1mM NaF	1ml 0.5M NaF	20μl 0.5M NaF
complete protease inhibitors