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方案2 蛋白质还原和S-羧甲基化:大规模方法

2019.3.28


实验方法原理

蛋白质链间或链内完整的二硫键,会给酶解或化学裂解带来麻烦。如:

1.二硫键连接的肽段洗脱物,在基于RP-HPLC的肽段作图中会产生单个的峰,从而使这些肽段图很难解释;

2.最理想的方法是在序列测定之前,分离由S—S键连接的肽段,否则会使序列数据的解释变得复杂;

3.没有断裂二硫键的蛋白质不便于蛋白质的片段化。

用于断裂二硫键的最普通方法,是将胱氨酸还原成半胱氨酸残基。可是,半胱氨酸残基具有很高的反应性,导致序列测定变得复杂(比如,形成随机二硫键,以及在去掉还原剂后很容易被氧化)。基于这个原因,通常要使它们变成稳定的衍生物(如通过烷化作用)。

在本方案中,完整的蛋白质(>lmg) 首先被还原,然后被碘乙酸(或碘乙酰胺)S-羧甲基化,得到半胱氨酸衍生物 S-羧甲基胱氨酸(或 S-羧甲基半胱氨酸),利用化学测序方法很容易检测。另一种常用的烷基化试剂是 4-乙烯基吡啶,产生 4-乙烯基吡啶半胱氨酸(RafteryandCole,1996)。4-乙烯基吡啶半胱氨酸很容易通过 Edman 降解法(作为 PTH 衍生物)和基于质谱的序列测定方法加以检测。对于微量蛋白质(<100ug)的还原和 S-羧甲基化,见方案 3。

实验材料

冻干的纯化蛋白样品

试剂、试剂盒

乙酸(1mol L)(超纯级)烷基化缓冲液NH4HCO3二硫苏糖醇(DTT)盐酸胍浓HCl碘乙酸β-巯基乙醇N'N-乙基吗啉乙酸缓冲液还原缓冲液

仪器、耗材

层析系统和尺寸排阻柱氮气pH试纸聚丙烯管聚乙烯管

实验步骤

一、样品还原

1.在还原缓冲液中,溶解蛋白质样品(约 10 mg 蛋白/ml)。

2.加入准确称量的物质的量大约是蛋白质 60 倍的固体 DTT(比如,大约是蛋白质重量的一半),或使其终浓度为 0.lmol/L。

3.在溶液上方轻轻吹氮气(或氩气)30s。

可以在氮气罐调节阀的聚乙烯塑料管口接一根巴斯德吸管,调节氮气流以至于手背基本觉察不到。

4.37°C 孵育蛋白质溶液 3 h。

5.如果需要,-SH 基团的数量可以用 Ellman 法测定(见方案 4)。

二、样品烷基化

有些情况下,经还原和烷基化的蛋白质可以通过 RP-HPLC 迅速脱盐,然后在少量易挥发溶剂中复性。这种方法对于低分子质量(10~25kDa) 的蛋白质,比如生长因子和细胞因子尤为有效。利用 RP-HPLC(TFA/乙腈溶剂系统)脱盐(和样品浓缩),已经成功地应用于微量样品(见方案 3)。

6.在冰上冷却、还原蛋白底物溶液。

7.加人新鲜配制的溶解于少量(约 0.2 ml) 烷基化缓冲液中的碘乙酸(最多与蛋白质底物等质量或者用少量的碘乙酸钠贮备液(每 100ul O.lmol/L NaOH 中溶入 15 mg 碘乙酸),使其物质的量略大于混合物中-SH 基团的数量(即蛋白质的-SH 基团加上 DTT)。

8.轻轻拍打管壁,混匀管中的内容物。

9.用氮气注满反应管,持续 30s。

10.室温避光,孵育反应 15 min。

避光反应是为了防止碘乙酸分解产生碘离子。

11.加入稍过量的卜巯基乙醇(每 5 mg DTT 约 50ul),以去除多余的烷基化试剂,终止反应。

12.用浓盐酸调节溶液的 pH 为 2~3 滴 0.5ul 的反应混合物到 pH 试纸上,以检查溶液的 pH。

我们推荐用小规模的实验来检验烷基化蛋白质的可溶性(由于蛋白质不同其溶解性会有显著差别)。可选用的易挥发的溶液和缓冲盐包括 1mol/L 乙酸(pH2.1),10 g/L NH4 HCO3(pH7.8) 和 0.2mol/L N-乙基吗啉乙酸缓冲液(pH8.0)。蛋白质可以通过冻干从这些溶液中提取。

三、S-羧甲基蛋白质的回收(脱盐)

经还原和烷基化的蛋白质,可以在挥发性溶液(比如 1mol/L 乙酸)中析出,或从缓冲盐溶液(比如碳酸氢铵)中脱盐。可是这一方法费时(一般 24 h 中需要换几次透析液),而且蛋白质损失较大。透析后的蛋白质可以通过冻干回收。

13.去掉多余的试剂,通过尺寸排阻层析,使蛋白质快速脱盐。

14.用冻干的方法,使还原和烷基化的蛋白质从 1mol/L 乙酸中回收,制成干粉。

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