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方案12 应用分子扫描器进行蛋白质组分析实验

2019.3.29
试剂、试剂盒

乙腈α-氰基-4-羟基肉桂酸(CHCA)α-甲苯磺酰-L-精氨酸甲酯(TAME)氨基黑封端(capping)试剂考马斯亮蓝 R250HCl石蜡油PBS-TweenTris-Cl胰酶凝胶电泳试剂

仪器、耗材

电转膜仪电泳系统IAV膜MALDI 样品板质谱仪PVDF 膜旋转杂交仪UV 可见分光光度计水浴锅

实验步骤

一、IAV-胰酶膜的制备

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二、固定化胰酶活性的检测

A1469155541579jmsppxbwxnpng_small.jpg

三、凝胶电泳分离蛋白质


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四、胶的染色

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五、蛋白质双平行消化

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六、膜结合蛋白的染色(本步骤为选做)

将 PVDF 膜用 0.5% 的氨基黑染色 1 mm,然后用水脱色。

七、PMF 数据的采集

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八、蛋白质的鉴定

1.使用质谱仪的采集软件,设置质量峰的检测阈值,该值是针对一组校准过的图谱而优化获得的(相应标准参见表 8.9 和表 8.10)。然后将 MALDI 板上的位置转换成相应的表观分子量(Mr) 和等电点(pI)。

已经开发出了使鉴定过程自动化的工具(Gras,et al,1999;Perkins,et al,1999)。

2.整合 PMF 及计算出的表观分子量、等电点等数据,并设置相应的肽质量误差 711 围和化学修饰参数,然后将整合的所有数据自动提交到 SmartIdent(http://ch.expasy.org./tools/)。

鉴定过程必须考虑到弱表达的蛋白质及重叠的蛋白质斑点,因此 PMF 搜索的最小肽段匹配数应该尽可能少(即 3 个肽段)。未酶切位点设为 1。在任何情况下,那些带有未酶切位点的肽段或有人工修饰(如丙酰胺半胱氨基,proionamidecysteine) 的肽段,对最终得分的贡献都少于那些没有未酶切位点和未修饰的肽段。众所周知,MALDI 样品板上的质谱采集位点影响质量的准确性(Egelhofer,etal,2000)。此外,粘到 MALDI 板上的膜的微弱翘曲也会导致误差。所以,预期的质量误差会高达〇.6Da,通常这不至于影响蛋白质的鉴定,因为 SmartIdent 工具通常能够对校对误差给予补偿。

3.将质量峰列表和鉴定结果转换成 text 文件。

九、建立真实图像

按照 Bienvenut 等(2001) 介绍的程序分析归类所鉴定的蛋白质。以下一些标准可用于从鉴定结果中找出、排除错误结果:

(1)同一种蛋白质的鉴定结果应该集中在 2D 凝胶上的某一点的区域范围内,因此,如果鉴定结果分数在膜的一个比较大的区域,则应该予以排除。

(2)鉴定结果需要基质峰或污染峰相匹配的,则其结果应予排除;同样,弱表达的蛋白质鉴定时,如果匹配的是高丰度蛋白质的肽段,则也应排除。

(3)平均得分低的鉴定结果必须舍弃

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