阻断FC受体方法
如果培养的细胞在细胞表面上有许多FC受体（如单核细胞，巨噬细胞），或者细胞在无血清的培养基上培养。通过用人AB型血清对细胞进行前处理后，会明显地阻断单克隆抗体的非特异性结合。注意此法并不适用于全血染色，因为在全血染色中有高浓度的血清存在。
Ⅰ、反应体系
A、 抗体
1、 第一抗体：常用的或自备的抗体
a、 如果第一抗体或自备的抗体能够进行荧光标记（如FITC，PE或其他），请参考直接染色步骤
b、 如果第一抗体不能进行荧光标记，则参考间接染色步骤
2、 第二抗体：经荧光标记过的多克隆抗体
B、 缓冲体系：PBS(Ca2+ and Mg2+ free,e.g.,Cat.#9240,Irvine Scientific,Santa Ana,CA)＋2%新鲜小牛血清（或者0.2%BSA）＋0.1%叠氮钠
C、 HAB（e.g.,Cat.#50009,Irvine Scientific,CA），其他途径购买的经热失活的HAB或经56℃失活1小时的HAB。将其分装成小包装并于-20℃贮藏。
Ⅱ、步骤
1、 将要检测的样品按常规的方法制成单细胞悬浮液。在最后的步骤中，用1ml预冷的缓冲液至少洗一次，再用预冷的缓冲液将细胞悬浮至浓度为1×107cells/ml（从而50μl=5×105cells）
检测细胞活力是否达到90%。如果细胞活力低于90%，必须通过Ficoll-Hypaque分离法去除死细胞，否则死细胞会非特异地结合到抗体上的。更适宜的方法是将死细胞通过流式细胞仪分析加以区分，以去除死细胞（具体请参考在通过流式细胞仪捕获前在最后的重新悬浮细胞时加入propidium iodide或7-氨基-放线菌素D的方法）
2、 加入50μl的细胞悬浮液至离心管底部。
3、 在每一管中分别加入50μl的HAB，并充分混匀，于室温中静置1分钟以上。
4、 然后加入适宜数量的单克隆抗体至离心管底部，置于冰上。
注意：进行两种或三种颜色染色时，请同时将所有的已经荧光标记的抗体同时加入。
5、 轻轻振荡后，于4℃下暗置30分钟。
6、 用1ml的缓冲液洗两次，然后置于4℃下以备通过流式细胞仪进行捕获。
间接染色法
1-6、如前所述，用经稀释的未标记的单克隆抗体对细胞样品处理；
7、 将细胞沉淀重新悬浮于50μl的HAB中，混匀，于室温中静置1分钟以上；
8、 加入50μl经荧光标记的第二抗体稀释液；
9、 轻轻振荡后于4℃下暗置20分钟；
10、 用1ml的缓冲液洗两次，于250g下离心5分钟；
11、 将样品重新悬浮于1ml缓冲液中，于4℃下避光保存待用。
注意：此法并不适用于Ig表面染色或用抗体直接对FC受体进行染色。
