RAPD分析技术-2
（2）扩增结果差，条带模糊或难以辨认。
――更换Taq聚合酶缓冲液。
――检查引物（使用另外一个引物，或者将引物末端标记，在 16% 6mol/L尿素聚丙烯酰胺胶上电泳检测）。
――检查Taq聚合酶活性（与不同批量的酶作比较）。
――改变DNA浓度。
（3）高相对分子质量产物弥散状分布>4kb。
――降低DNA浓度。
――降低Taq聚合酶浓度。
――减少凝胶上样量。
―― 可能是由于循环数过多的结果（Bell和Demarini 1991），减少循环数。
――确认是否使用正确的缓冲液（不是水！）制备凝胶。
―― 在较低的电压下电泳。
（4）在对照和所有检测样品中均为一条很强的单一带。
――确认引物序列不是回文结构。这可能是引物多聚体造成的结果。使用不同的引物。
（5）带谱不可重复。
――DNA过多或过少。把基因组DNA浓度控制在10～100ng范围之内，DNA量太少时，“真正”靶序列与引物的结合效率低，因此引物扩增会产生假的条带，这就称为引物伪迹；DNA量太多会导致错误配对（指引物与基因组DNA的配对）。每个样品进行两个不同DNA浓度的反应。
――只考虑主要条带。
（6）染色后凝胶背景太强影响分辨率。
―― 减少染色时间。
――凝胶脱色时间延长。
――PCR反应中DNA含量或Taq聚合酶过多。
（7）低相对分子质量产物分离不充分。
――在更高浓度的琼脂糖凝胶、专业纯凝胶或聚丙烯酰胺凝胶上分离产物。
5 RAPD分析的优越性和不足
RAPD是一种全新且有效的遗传标记，与其他分子标记相比，具有许多优越之处：
①合成一套引物，可用于不同生物基因组的分析。相对来说，RFLP标记具种族特异性，这限制了其应用。
②RAPD技术简便易行，省力省时。不需要RFLP分析的预备工作，如克隆制备、同位素标记、Southern印迹和分子杂交。并且RAPD检测灵敏方便，用荧光染料或同位素标记均可检测，这大大增加了其分析速度。即使用序列胶来分析RAPD，单独一人仅用36小时便能完成120个样品的分析，而RFLP至少要花一周时间。
③RAPD分析所需样品DNA量极少。仅为RFLP的1/1000～1/200，这对于生物早期取样鉴定或DNA受限制的情况大有益处。
④由于RAPD用于构建基因图谱时不需要克隆，这可打破克隆载体和宿主的限制，扩大了应用范围。
⑤每个RAPD标记相当于基因组分析中的靶序列位点，这对共同协作的研究项目，可简化信息的转移过程。
⑥RAPD标记可以对那些RFLP难以区分的基因组区域作出遗传连锁图。⑦RAPD分析能自动化，减少了象RFLP那样的麻烦手续。
然而，RAPD标记也存在某些不足。比如，RAPD标记难以区分开杂合子和纯合子基因型，不能有效的鉴别出杂合子。另外，RAPD反应易受外界因素影响，重复性不太令人满意，等等。因此，使
RAPD实验条件标准化就很重要了。Black（1993）综述了一些影响条带的书目、大小和强度的因素，其中包括PCR缓冲液。dNTP和Mg2+浓度、循环参数（退火温度、变温时间、PCR仪）、Taq聚合酶来源（Schierwater和Ender，1993）、DNA条件和含量（Black
等，1993）。
6 RAPD分析在分子生药学中的应用
目前，RAPD标记已被广泛应用于分子生药学各方面：
①生物多样性：随着植物药研究的不断深入，可持续开发利用药用植物资源的问题越来越受到重视。应用RAPD技术进行药用植物生物多样性研究，可以在遗传多样性水平上了解天然产物多样性与物种、生态及地理分布的关系，挖掘潜在的药物资源，为开发新药寻找途径。RAPD方法可以检测物种的遗传多样性，探讨物种的亲缘关系和进化趋势。因此它是药用植物资源保护和种质资源保存的依据，特别是对濒危物种的研究更具有实际意义。（舒艳群,
白守梅, 陈毓亨. RAPD技术在药用植物研究中的应用. 中草药, 1999,30(2):147）
②RAPD标记可用于生药分类，在 DNA分子水平上鉴别生物不同种、亚种、变种甚至株。
③RAPD标记可用来制作生物类生药系统发育关系上的树状图，特别是种内水平。这为生药亲缘进化关系,寻找新的药用资源开辟了新途径。
④RAPD标记可用于构建基因图谱，进行基因定位，和对未知序列的DNA片段扩增与测序。
⑤RAPD 标记亦可用于遗传连锁图谱的构建，指导药用植物育种，防止品种间杂化和自交，选育优良性状的品种。
