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蛋白质印迹法的结果分析

2023.2.14

可能出现的问题如下。

1.背景过高

①封闭不充分,应更换封闭液或延长封闭时间;

②抗体浓度过高,应适当增加抗体稀释倍数;

③洗膜不充分,应增加洗涤次数或洗涤时间;

④膜质量较差,应选择高质量的NC膜,并且整个实验过程中保持膜的湿润。

1.背景高

可能原因

验证或解决办法

膜没有完全均匀湿透

使用100%甲醇浸膜5~10min

洗膜不充分

增加洗液体积和洗涤次数

阻断不充分

增加封闭液孵育时间,或者提高温度选择合适的封闭试剂(脱脂奶粉、酪蛋白等)

二抗浓度过高

降低二抗浓度

检测过程中膜干燥

保证充分的反应液,避免出现干膜现象

曝光过度

缩短曝光时间

抗体与阻断蛋白有交叉反应

检测抗体与阻断蛋白的交叉反应性,选择无交叉反应的封闭剂。洗涤液中加入Tween-20可减少交叉反应

2.没有阳性条带或条带很弱

①目的蛋白质未充分转移到膜上或洗膜过度,应使用丽春红S染色以检查转膜效果,或减少洗膜次数,缩短洗膜时间;

②抗体不匹配或一抗过期或一抗不能识别变性或还原的蛋白质,应注意选择特异性的抗体并在有效期内使用,或改用非变性凝胶系统;

③抗体浓度低,应适当增加抗体浓度,或延长孵育时间;

④样品中的目的蛋白质含量低或没有目的蛋白质,应增加上样量;

⑤封闭过度,应更换封闭液,缩短封闭时间。

2.没有阳性条带,或者阳性条带比较弱

可能原因

验证或解决办法

抗体结合不充分

增加抗体浓度,延长孵育时间

酶失活

直接将酶和底物进行混合,如果不显色则说明酶失活了。选择在有效期内、有活性的酶联物

标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低

设置阳性对照,如果阳性对照有结果,但标本没有则可能是标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。可考虑增加标本上样量解决靶蛋白含量低的原因

试剂不匹配

一抗与组织种属,一抗与二抗或/和底物与酶系统之间不匹配。通过设置内参照可以验证二级检测系统的有效性

一抗失效

选择在有效期内的抗体;并选择现配现用的工作液

HRP抑制剂

所用溶液和容器中避免含有叠氮化钠

膜没有完全均匀湿透

使用100%甲醇浸透膜

靶蛋白分子质量小于10kD

选择小孔径的膜,缩短转移时间

转移时间不够

对于厚的胶以及高分子量蛋白质需要延长转移时间

抗体活性降低

选择在有效期内的抗体,工作液现配现用,避免长时间放置

封闭过度

减少封闭剂的量或缩短时间;换用不同封闭剂类型

曝光时间过短

延长曝光时间 

3.非特异性条带多或位置不准确

①目的蛋白质被乙酰化、磷酸化、甲基化、烷基化、糖基化,应选择去修饰剂以恢复原有目的蛋白质大小;

②目的蛋白质降解,制备样品时应使用蛋白酶抑制剂,并使用新鲜标本;

③抗体浓度过高,应适当稀释抗体;

④目的蛋白质存在二聚体或多聚体,样品应充分煮沸10min,使蛋白质彻底变性再上样。 

3.条带位置不对;或有非特异性条带

可能原因

验证或解决办法

二抗的非特异性结合

增加一个对照:不加一抗,其他操作过程不变,即可验证背景是否有二抗系统来源。选择其他二抗(特异性更强的,只针对重链的)

一抗的特异性不够

使用单克隆或者亲和纯化的抗体,保证抗体的特异性

蛋白质降解

使用新鲜制备的标本,并使用蛋白酶抑制剂

二聚体或多聚体存在

增加蛋白质变性过程及强度

抗体浓度过高

降低抗体(一抗、二抗)浓度,可以减少非特异性条带

蛋白质上样量过大

降低上样量

封闭剂中有聚集体

使用前过滤封闭试剂

HRP耦联二抗中有聚集体

过滤二抗试剂,去除聚集体

HRP含量过高

降低酶联二抗的浓度 

Western Blotting常见问题及解决方案

问题

原因

解决方案

胶不平

玻璃板不干净

胶板洗刷干净;

催化剂或加速剂的量不合适

加入过硫酸铵和TEMED的量要合适;


试剂未混均,致使部分胶块聚合不均匀

加入试剂后摇匀,使其充分混合;


受热不均匀导致胶聚合不均匀

温度合适


凝胶漏液

玻璃板未对齐

两块玻璃板底部要对齐

条带比正常的窄

凝胶聚合不均匀

灌胶时候尽量混合均匀,动作轻缓;

加样孔扭曲

拔梳子要迅速,清洗加样孔要小心,以免把上样带扭曲


“微笑”条带

样品盐浓度过高会挤压其他条带导致宽窄不一

纯化样品,调整盐浓度

“倒微笑”条带

胶板底部有气泡会影响电泳效果

应赶走胶板底部气泡,同时注意电泳槽装置是否合适

凝胶肿胀或卷曲

取出凝胶后暴露空气中过久

可将凝胶在转膜之前放到转膜缓冲液中浸泡5~10min

条带歪斜或漂移

电转仪长期使用导致海绵变薄,“三明治”结构不紧凑导致

可在两块海绵之间垫上少许普通的草纸

单个或多个白点

膜与胶块之间有气泡

确保膜和胶块之间没有气泡

转膜缓冲液过热

缓冲液中离子浓度太低,电流或电压太高

转膜过程注意降温

背景过高

膜没有均匀浸湿

转膜前用100%甲醇将膜完全浸湿

膜或者缓冲液污染

拿取膜与吸水纸时要戴手套


封闭不充分

更换新鲜转膜缓冲液


抗体与封闭剂出现交叉反应

检测一抗、二抗与封闭剂是否有交叉反应


抗体浓度过高

杂交前检测一抗、二抗的工作浓度


封闭时间与清洗时间过长

减少封闭或清洗时间


上样量过大

合适的上样量


压片时间过长

缩短压片时间 



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