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蛋白质组学样品前处理的方法

2021.8.23

要回答这个问题,首先需要理解样品前处理需要达到的目的:减少人为降解和修饰,并且尽量多的释放肽段。

整个过程可以分为以下流程:先从组织、体液或细胞中提取蛋白质,拿到蛋白混合溶液(根据你的研究目的,可以对蛋白先做分离,或者不分离),接下来还原烷基化(还原的过程是将蛋白的二硫键打开,然后烷基化可以修饰巯基,防止游离的巯基再生成二硫键)处理,并酶解成肽段。

1,样品的收集与保存

组织样品

1) 对于人体手术切除的组织,有条件的话,最好用PBS(磷酸缓冲盐溶液,作为溶剂,起溶解保护试剂的作用)取完之后直接去血。如果没有去血,可以-80℃液氮保存,干冰运输。

2)对于小鼠、大鼠、兔子之类的组织样品,建议用灌流的方式来去血,尤其是像肝脏、胃、心脏这类大的组织,可以直接用灌流的方式去血,去得最干净。其次的方案是在后期剪碎的时候去血。

细胞样品

常规实验,建议收到5*1E6~1E7个细胞以上的样品量(有些实验需要的样品量会少一些,后面会详细讲)。细胞取好后,首先用PBS清洗一下细胞表面,因为大部分培养基里面都含有血清,这部分血清得洗干净了先~

如果是做分泌蛋白研究的话,首先用PBS清洗样品几次,再用条件培养基(不含有血清的培养基)进行培养,根据细胞情况,大概12个小时以后,离心,去掉细胞碎片,取上清,就能提取到分泌蛋白了。

血清样品

1)血浆样品:可以通过医院常用的EDTA抗凝管进行收集,收集到的血浆会呈悬浮状态,离心去掉血细胞。

2)血清样品:现在大部分研究都直接针对血清样品,它的成份更简单,没有凝集素,没有大量的血细胞,针对性会更强。收集血清样品时,直接把血清吸到管子里,室温静置让它凝结,上清黄色部分就是血清样品啦。
2,研磨或超声破碎样品,为了减少人为操作引入的修饰,通常会准备大量的冰,进行冰上的操作。同时还需要加入蛋白酶抑制剂,防止在操作过程中蛋白被样品中自带的蛋白酶降解掉。

3,充分熔接蛋白质,如果蛋白没有充分溶解,能提取到的蛋白就会很少,达不到研究目的。

4,充分解旋蛋白质,通常,蛋白质都是成球状的稳定状态,解旋蛋白质就是将球状蛋白中的二硫键打开,让它形成链状结构,以便进行下一步酶切。

5,酶解蛋白质,一般会用多种酶对蛋白质进行酶解。

6,去除杂质,我们要知道,质谱是一个非常灵敏的仪器,它检测的是多肽的质荷比。所有的盐类,以及所有会进行离子化的杂质,都会干扰到肽段的检测。所以我们会要求进入质谱之前的蛋白样品非常干净。在蛋白水平及肽段水平都会进行去除杂质的步骤。

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