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重视临床检验标本采集和处理

2019.8.13

临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。为做到临床检验质量保证，中华人民共和国卫生部卫生技术标准化委员会已将临床检验标本采集和处理的有关问题，列为国家和行业的标准化文件，以达到对临床检验工作的规范化要求。如中华人民共和国卫生行业标准WS/T225-2002﹑WS/T226-2002﹑WS/T220-2002﹑WS/T229-2002﹑WS/T223-2002﹑WS/T222-2002﹑WS/T230-2002和中华人民共和国国家标准GB 19489-2004等，分别对临床化学检验标本﹑变携式血糖仪血标本﹑凝血因子测定标本﹑尿液标本﹑乙型肝炎表面抗原酶免疫检测标本﹑临床酶活性浓度测定标本﹑临床诊断中聚合酶链反应标本和实验室生物安全等标本均提出了标准化的要求。
    一、必须十分重视临床检验标本采集和处理
    实践证明，为保证临床检验质量，必须做到全过程质量控制，即对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括：实验前（分析前）﹑实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制，其中实验前质量控制尤其重要。国内外均有报道，实验误差中60～70%来自实验前（分析前），而且实验前（分析前）误差是仪器﹑试剂﹑质控品和标准品等再好无法解决的。因此，必须注意做好实验前质量管理。实验前质量控制主要包括：①病人准备；②标本收集；③标本储存；④标本运送；⑤标本处理等。
    1.病人准备
标本采集前病人的状态对检测结果会有一定的影响，因此，各种不同检测项目对标本
采集前病人的状态有不同的要求。如：血脂测定须病人禁食12-14h后采血（否则出现脂血）；情绪紧张会使血糖升高；吗啡、可待因可使淀粉酶（AMS）升高；吃香蕉能使尿液5-羟吲哚乙酸升高等。所以，在病人要做某些化验检查之前，必须嘱咐病人做好相应的准备。2.标本采集
临床检验标本中血、尿标本占95% 以上。收集标本应注意：
（1）避免干扰物污染（特别是定量分析标本）；
（2）采血部位和方法要正确；
（3）标本标记定要无误；
（4）无人为的溶血和混浊（收集标本用力震荡或用玻璃棒及木棍搅拌会导致溶血，餐
后采血会出现脂血而混浊）；
（5）合理使用抗凝剂及防腐剂；
（6）收集区温度最好不超过20OC；
（7）标本采集后要尽快送至实验室。
3.标本运送1）标本由临床运送至实验室要尽可能快，必要时可分离出血清（浆）后运送；
（2）标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染（标本管要盖盖子）；
（3）有特殊要求的标本要按特殊要求运送（如血气分析标本应严格密封，与外界空气隔绝；测定VA、VB6、ß-胡萝卜素、胆红素等标本，应应注意避免暴露于光线下，用黑纸或铝箔保护标本）；
（4）关于自动化运送（物流）系统（真空采血管；运送车；气运；人工运送等物流系统），应注意保证对实验结果无影响（保证红细胞膜完整性）。红细胞膜完整性被破坏会严重影响实验结果的项目主要有：LDH、K、Hb、ACP；有值得注意的影响的项目主要有：Fe、ALT、T4；有轻微影响或不太受影响的项目主要有：TP、ALB﹑ALP、AST﹑TBiL﹑WBC、APTT、TT﹑Cr、Urea、UA、P、Mg、Ca。
4.标本送出及签收
临床人员从病人采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接受临床标本，均应按标准化要求进行，并且一定要做到认真核对。包括标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接受人员都要做认真的记录并签字。
5.实验室标本处理
实验室接受标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确性。如：血糖标本不及时处理，会因糖酵解作用引起测定结果降低（室温下每小时降低7%，即使在真空采血管中在较低温下也每小时降低1.9%）；酸性磷酸酶测定血标本应尽快分离血清并立即测定，否则测定结果会很快降低(室温放置1-2h测定结果降低50%)；电解质测定血标本应及时分离血清和血浆(尤其血钾测定时)否则血钾测定结果可能增高；血氨和血气分析不仅标本要按规范化要求采集，而且标本送检后一定要及时检测。
实验室接受标本后的处理应注意以下事项：（1）时间：实验室接受标本后应尽快予以分类和离心。①促凝标本采血后5-15min尽早处理；②抗凝标本可采血后立即离心；③非抗凝（无促凝）标本采血30-60min后离心；
④抗凝全血标本（测Li、Zn、原卟啉、原孢菌素）可以不离心。
（2）温度：一般标本为室温（最好是22-25ºC）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持2-8ºC直到温度控制离心。（3）采血管放置：应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。
（4）采血管必须封口：管塞移去后会使血PH改变，影响结果，如可使PH、Ca2+增高，使ACP减低；封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。关于实验室标本拒收规定
主任及有关负责人签字同意并有下列情况时可考虑标本拒收（应注意与临床沟通）：
（1）标本属性不清(标记错误或无标记，标本标记与申请单标记不符等)；
（2）采血量不足(或血量与抗凝剂等比例错误)；
（3）标本收集管使用错误。如：PT、APTT、FBG、TT、DD应使用枸橼酸钠抗凝管，CK、电解质、血气、氨基糖苷应使用肝素锂抗凝管，否则是错误的；K+、Na+、Ca2+可用非抗凝血，使用草酸钾、草酸钠抗凝是错误的；血NH3和含氮物质测定用草酸氨抗凝是错误的；血细胞分析仪测定必须用EDTA-3Na、EDTA-2K抗凝；
（4）人为因素所致的标本溶血；
（5）标本运输不当(该冷藏而未冷藏的标本)。
二﹑临床常用检验项目的标本采集和处理
（一）血常规检验标本
一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。采血注意事项为：
1. 采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用力震荡）；
2. 应按抗凝管刻度准确采血至2ml；3. 采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。
（二）红细胞沉降率（血沉， ESR）测定标本
静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血）。注意事项：
1.采血后立即上下颠倒混合5-10次；
2.单独采1管血,准确采血至2ml（抗凝剂：全血 = 0.4 ：1.6）；
3.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。
（三）凝血检测（ PT、APTT 、 TT 、 FBG 、 DD ）标本
静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血 = 0.2：1.8 ）。采血注意事项：
1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；
2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）；
3.应单独1管血；
4.必须准确采血至刻度线2.0ml；

5.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块；
6.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。
（四）血型与血交叉标本
为EDTA-2K抗凝血。采血注意事项：
1.最好血型与血交叉各采1管血（要求保留血样）；
2.采血量分别为1.0ml和1.0～2.0ml；
3.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）。
尿液常规检查标本
１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：
(1)新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；
(2)尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；
(3)避免混有经血、白带、精液和粪便；
（4）尿液标本冰箱可保存6～8h，但细胞等有型成分会有破坏，会有结晶析出；
（5）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；
（6）根据不同检测目的选择不同的防腐剂：临床最多用的尿液防腐剂为①甲醛（formalin），用于尿液有形成分检查，浓度为400mg/L尿液即40%；②甲苯（toluene），常用于尿糖和尿蛋白等化学成分的定性或定量检查，5-20ml/L尿液；③浓盐酸（hydrochloric　ａｃｉｄ），用于定量测定尿１７－羟、１７－酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等，浓度为１ｍｌ/L尿液。
２.尿液常规检查标本采集方法：
（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；
（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；
（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、坚定和药敏）；
（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。
（５）３ｈ、１２ｈ等计时尿和餐后尿等特殊实验尿，则应按医嘱要求进行留尿。

（六）粪便常规检查标本
1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取；
2. 送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；
3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查，表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；
4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；
5.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检，必要时留取整份粪便送检。
6.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。
7.做便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。
浆膜腔积液检查标本
(1)浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；
(2)送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用
无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。
(3)标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；
(4)用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。

临床化学检验标本
临床化学检验多用非抗凝血标本，有条件应使用真空负压采血管。临床化学检验血标本采集主要注意事项是：
1.多项化学检测一般可采1管血；
2.采血量视检查项目多少不同而异，单通常为4.0～5.0ml；
3.如果检测项目不是很多，生化和免疫也可以采1管血；
4.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a橼酸盐管；b肝素管；cEDTA管；d草酸盐/氟化钠管。
5.不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此而影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。
（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5～10 次，22～25ºC（室温）15～30min后可自行（自发）完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。
（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝管采血，采血后立即颠倒混合5～10次，采血后数min内可离心分离血浆。
（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8ºC冷藏（标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。，全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得＞2h
（4）代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中Glu，22～25ºC稳定24h，2～8ºC稳定48h；氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。
(5)实验室离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血)；必须剥离时应动作轻柔；真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。
6.关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）
（1）离心时间和相对离心力：离心时间为5～10min；相对离心力（RCF）为1000～1200×g；
（2）温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等）离心温度应控制在4ºC；无特殊温度要求的分析物离心温度在20～22ºC；冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。
（3）再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短
时间内完成；带分离胶的采血管不可以二次离心。
7．离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出一定量之前）
（1）血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离；
（2）分离出的血清或血浆的储存：①8h内可以储藏于22ºC，8h以上储藏于2～8ºC
48h以上储藏于－20ºC；② 标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；③分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；④用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；⑤ 血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）。
血气分析标本
血气分析标本为动脉（股﹑肱﹑挠动脉）抗凝全血，抗凝剂为肝素钠（0.05mg/ml，即1000u/ml，用9g/L的生理盐水配制）。标本采集注意事项为：
1.采血一定要用厌氧技术（让血液尽量少的与空气接触）；
2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内，使其尽可能湿润注射器内壁，然后排出液体肝素，留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可；3.采血量0.5～1.0ml（最好2.0ml）；
4.抽出的血液不能有气泡，如有气泡应立即排出；
5. 标本采好后立即封闭注射器针头，用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。

微生物学检验标本
微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。
1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项
（1）标本采集
1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；
2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率；
3）标本采集应严格执行无菌操作；
4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；
5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；
7）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。
（2）标本运送
1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；
2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。
（3）标本验收
1）实验室只能接受和处理合格标本；
2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。
（4）处理
根据检验目的结合临床资料选择合适的培养基接种标本；混有正常菌群的标本应做定量细菌培养；不能精确定量或常规定量操作较困难的痰、伤口拭子等标本，应分离出优势菌做细菌鉴定和药敏实验，同时注明细菌量化指标；抗菌药物治疗的标本，必要时应加入某些物质以中和药物对细菌的抑制作用。
2．微生物学检验标本采集和处理
（1）尿液标本采集和处理
通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4-8℃冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2w左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述时间此时阳性率高。尿液微生物学检验标本采集方法如下。
1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌盛器中留取中段尿液5～10ml
2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；
3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；
4）耻骨上膀胱穿刺法：培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用；
5）肾盂尿采集法：必须由临床医生采集。
（2）粪便标本采集和处理1）采集时间：①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；②伤寒患者于发病2w以后采集粪便；③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。
采集方法：①自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。
（3）痰及下呼吸道标本采集和处理1）自然咳痰法：①晨痰为佳；②先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；③再用力咳出呼吸道深部的痰；④痰量不得少于1ml；⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。
2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。
3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。
（4）血液及骨髓培养标本
抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童1～4ml）；
2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌、L型菌不同培养瓶）中送检；
3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取6份血液标本送检；
4）必要时可需氧菌、厌氧菌（占10%）和L型菌同时培养；
5）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养；
6）必要时可取骨髓1～2ml，无菌注入专用培养瓶中送检
5）脑脊液培养标本
采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。
采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

（6）穿刺液培养标本包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等穿刺液培养标本。
采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。
采集方法：①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；②标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；③标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；④可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）

（7）胃液及胆汁培养标本
抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。
（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。
（10）泌尿生殖道培养标本1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。
2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。
3）宫腔分泌物：在必要时用外套保护膜的灭菌导管抽取。
4）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。
5）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。
6）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。
11）烧伤感染培养标本
烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。
（12）厌氧菌感染培养标本
1）标本采集①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。
2）标本运送①标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；②运送方法：a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送；b含运送培养基的无氧小瓶运送；c厌氧罐运送（组织块）；d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送；e一般不采用棉拭子法。
13）真菌感染培养标本
1）浅部真菌感染标本采集①皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；②指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；
③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。
2）深部真菌感染标本采集①血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；②脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。
（14）病毒感染标本
1）标本采集原则：根据不同检查目的采集不同的标本，见表1。尽量于疾病早期采集标本；尸检标本应在患者死亡后6h内采集标本。
标本采集方法：①呼吸道病毒感染标本用咽拭子采集；让患者先咳嗽，再口服0.5%乳蛋白水解物15ml，反复含漱3～4次后吐到容器中立即送检；儿童常应用无菌棉拭子，先沾好0.5%乳蛋白水解物，再去涂拭扁桃体周围组织，并立即泡在0.5%乳蛋白水解物中，立即送检；②乙脑病毒需采集血清或血浆，置无军菌容器中尽快送检；③尿液则取其中段尿立即送检（否则置4℃冰箱12h内接种）；④肠道病毒和柯萨奇病毒则采集新鲜粪便，尽快送检。
3）标本运送及保存：多数病毒对热不稳定，标本采集后应立即送检接种；如48h内接种，须置4℃冰箱保存；空运标本须置冰壶中48h内送到实验室并接种。

中国医科大学华宇医院张丽霞

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重视临床检验标本采集和处理

周锦帆